常用動物  大鼠，小鼠，性成熟，8-10周齡

適應性飼養后，用消毒棉拭子旋轉插入小鼠陰道內，并在陰道內輕輕轉動幾下后取出，涂于載玻片上，用95%酒精固定30min后晾干。涂片進行HE染色或瑞士染色，觀察動情周期。連續觀察2周，每日定時進行陰道涂片檢查，觀察動情周期。選擇連續有2個或2個以上正常動情周期（陰道涂片為大量無核角化細胞的大鼠），造模前一天每鼠肌注雌二醇0.1mg/(kg.d，大鼠)，使動物統一處于動情期。

捐贈鼠和接受鼠比例為1:2。

建模方法I

  大鼠：腹腔注射麻醉后，將大鼠固定于***上，腹部剪毛，消毒，并在無菌條件下開腹。在尿道口上約1cm處做垂直正中縱切口長約2-3cm進腹。大鼠子宮呈Y型，分離左側子宮，近端離左子宮角1cm處結扎，遠端離卵巢2cm處結扎，并結扎兩端間的子宮系膜血管，切除長約1.5-2.0cm的子宮段，立即放入盛有生理鹽水的培養皿中，修剪去子宮漿膜外的脂肪組織，縱向切開子宮腔，剝去漿膜層及肌層，將子宮內膜片剪成5mm×5mm大小，移植到腹壁血管豐富處，注意其內膜面與皮下組織貼合。逐層縫合傷口，待老鼠自然蘇醒后常規飼養。術后每天注射****，共3天。

  建模4周后，開腹檢查所有造模大鼠移植的子宮內膜是否生長。若見移植物體積增大，形成表面被覆結締組織并有血管形成、內有液體積聚的透明小囊泡，則證明造模成功。

建模方法II

小鼠：動情期C57BL/6小鼠，脫頸椎法處死，仰臥位固定于***，腹部酒精消毒后，鋪上無菌治療洞巾，戴無菌手套，在恥骨聯合上方0.5cm處，沿正中線剖開腹腔。找到Y形子宮，小心分別牽出左、右側子宮，細心分離雙側子宮系膜。離斷宮角與卵巢，在Y形子宮分叉分別剪斷左側及右側子宮，放入裝有10mL37℃生理鹽水的無菌彎盤中，反復漂洗子宮表面的血跡，進一步分離剩余粘附的子宮系膜。將兩個子宮角分別放置于兩個無菌彎盤中，將它們直接剪成大小約1mm3的大小均等的碎片，并將它們懸浮于37℃生理鹽水中。將捐贈鼠的子宮按1:2的比例接種于受鼠腹腔，用0.3mL生理鹽水懸浮彎盤里的組織碎片。

隨機取動情期C57BL/6小鼠，取臍下0.5cm偏正中線0.5cm處的左下腹為進針點，將溶有子宮組織碎片的0.3mL生理鹽水用20號針頭連同子宮組織快碎片注入接受鼠的腹腔，后放置于鼠籠。直至第9天。隨機取動物，處死后，取異位內膜，進行冰凍切片制備，HE染色觀察異位內膜病灶是否有典型的內膜腺體及間質，提示復制動物模型是否成功。