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    1．體外使用旋轉培養管大量培養雜交瘤細胞，從中獲取單克隆抗體。但此方法產量低，一般培養液內抗體含量為10—60ug／ml，如果大量生產，費用較高。小鼠可獲5一l0ml腹水。也可用注射器抽提腹水。

 

    2．體內接種雜交瘤細胞，制備腹水或血清。

 

    （1）實體瘤法：對數生長期的雜交瘤細胞按（1—3）×107／ml接種于小鼠背部皮下，每處注射o．2ml，共2～4點。待腫瘤達到一定大小后（一般10～20d）則可采血，從血清中獲得單克隆抗體的含量可達到1—10rug／m1。但采血量有限。

 

    （2）腹水的制備：常規是先腹腔注射0．5ml降植烷或液體石蠟于BALB／C鼠，1—2周后腹腔注射1X10⁶個雜交瘤細胞，接種細胞7～10d后可產生腹水。密切觀察動物的健康狀況與腹水征象，待腹水盡可能多而小鼠瀕于死亡之前處死小鼠，用滴管將腹水吸人試管，一般一只可反復收集數次。腹水中單克隆抗體含量可達到5—10mg／ml，這是目前zui常用的方法。還可將腹水中細胞凍存起來，復蘇后轉種小鼠腹腔，則產生腹水快、量多。

 

    單克隆抗體的純化方法同于多克隆抗體，腹水特異性抗體的濃度較抗血清中的多克隆抗體高，純化效果好。按要求的純度不同采用相應的純化方法。一般采用鹽析、凝膠過濾和離子交換層析等步驟達到純化目的，也有采用較簡單的酸沉淀方法。目前zui有效的單克隆抗體純化方法為親和純化法，多用葡萄球菌A蛋白或抗小鼠球蛋白抗體與載體（zui常用Sepharose）交聯，制備親和層析柱將抗體結合后洗脫，回收率可達90％以上。蛋白可與IgGl、IgG2a、IgG2b和IgG3結合，同時還結合少量的IgM。洗脫液中的抗體濃度可用紫外光吸收法粗測，小鼠IgG單克隆抗體溶液A₂₈₀（A）為1．44吸光單位時相當于lmg／ml。經低pH洗脫后在收集管內預置中和液對保持純化抗體的活性至關重要。