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細胞凋亡檢測-形態學特征的檢測方法
最近更新時間:2012-2-17
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一、普通光學顯微鏡觀察方法
1)蘇木素-伊紅染色(HE染色法)
石蠟組織切片的HE染色
1.取材組織塊,經固定后,常規石蠟包埋,4μm切片。
2.切片常規用二甲苯脫蠟,經各級乙醇至水洗:二甲苯(I)5min→二甲苯(Ⅱ)5min→100%乙醇2min→95%的乙醇1min→80%乙醇1min→75%乙醇1min→蒸餾水洗2min。
3.蘇木素染色5min,自來水沖洗。
4.鹽酸乙醇分化30s(提插數下)。
5.自來水浸泡15min或溫水(約50℃)5min。
6.置伊紅液2min。
7.常規脫水,透明,封片:95%乙醇(I)min→95%乙醇(Ⅱ)1min→100%乙醇(I)1min→100%乙醇(Ⅱ)1min→二甲苯石碳酸(3:1)1min→二甲苯(I)1min→二甲苯(Ⅱ)1min→中性樹脂封固。
2)甲基綠-派諾寧染色法
1.新鮮取材組織固定液中4℃固定3~6小時。
2.直接轉入95%乙醇脫水和無水乙醇脫水,二甲苯透明,石蠟包埋。
3.切片經二甲苯脫蠟,梯度乙醇水化至蒸餾水。
4.置染色液中室溫下染片約1h。
5.取出切片,不經水洗,用濾紙吸干多余染液。
6.插入丙酮中迅速分化。
7.轉入丙酮二甲苯(1:1)稍洗。
8.二甲苯透明2~3次。
9.中性樹膠封固。
3)Giemsa染色
1.收集細胞(1×106),PBS洗1次。
2.用細胞涂片離心機制成細胞涂片。
3.甲醇固定3~5min。
4.入Giemsa稀釋染色液15~30min,冬天在37℃溫箱中染色。
5.用磷酸鹽緩沖液分色,以鏡下控制為準。
6.涂片晾干后用中性樹膠封片。
4)瑞氏(Wright)染色
1.收集細胞(1×106),PBS洗1次。
2.用細胞涂片離心機制成細胞涂片。
3.甲醇固定3~5min。
4.用Wright液染色2min。
5.入Wright磷酸緩沖液稀釋液4~10min,然后用蒸餾水沖洗。此時如果顏色較深,可0.08%醋酸分化數秒鐘
6.直立晾干后,用中性樹膠封固。
二、透射電子顯微鏡觀察方法
1)透射電鏡樣本的取材和固定
培養細胞的取材和固定
1.常規收集帖壁和懸浮細胞,置離心管中離心,800~1000r/min,10min。
2.用0.01mol/L PBS 5ml重懸細胞。
3.將細胞懸液吸入有瓊脂空槽的離心管中。
4.離心,2000r/min,15~20min,使細胞成團。
5.小心吸去上清,加入2.5%戊二醛固定液固定細胞團,以免細胞團散開。
6.取出離心管內的瓊脂,仔細切下尖槽內含有細胞團的瓊脂塊。
7.將含細胞的團瓊脂塊投入含戊二醛固定液的小瓶中,4℃(可長期)保存。
8.用0.1mol/L PBS緩沖液洗1次。
9.1%鋨酸后固定30~60min。
三、熒光顯微鏡觀察方法
1)吖啶橙染色法
1.制備活細胞懸液,濃度約為107/ml。
2.取95μl的細胞懸液,加5μl的吖啶橙貯存液混勻。
3.吸一滴混合液點潔凈玻片上,直接用蓋玻片封片。
4.熒光顯微鏡選用激發濾片BG 12或BV等,阻斷濾片用515nm或SP3。
2)Hoechst33258染色法
1.原代細胞培養,細胞學涂片或細胞甩片機制備的單細胞片。
2.細胞固定液4℃固定5min。
3.蒸餾水稍洗后,點加Hoechst33258染色液,10min。
4.蒸餾水洗片后,用濾紙沾去多余液體。
5.封片劑封片后熒光顯微鏡觀察。
3)Hoechst33342染色法
1.將Hoechst33342加入培養的細胞中,終濃度為10μg/ml 37℃孵育30min。
2.4%的多聚甲醛和培養液以1:3混合,使多聚甲醛的濃度為1%,固定細胞5~10min。
3.固定好后,將細胞懸液涂在載玻片加蓋玻片。
4.熒光顯微鏡激發濾片選用UV激發濾片,阻斷濾片為400~500nm。
以上是先將細胞染色后再行固定觀察的方法,也可先固定后染色:
1.收集(0.5~3.0)×106個細胞,500~1000r/min,離心5min去上清。
2.PBS洗1次,500~1000r/min,離心5min去PBS。
3.用3%多聚甲醛50μl重懸細胞,室溫下固定10min。
4.PBS洗1次,500~1000r/min離心5min去PBS。
5.用15μl的Hoechst33258或33342重懸細胞,終濃度為16μg/ml,孵育15min。
6.取10μl放在玻片上,熒光顯微鏡下觀察,可數500個細胞,計算調亡率。