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RIPA 組織 / 細胞裂解液 規格；50ml 編號；WB-0072
產品簡介：RIPA裂解液(RIPA Lysis Buffer)是一種傳統的細胞組織快速裂解液。
RIPA裂解液裂解得到的蛋白樣品可以用于常規的Western、IP等。
RIPA裂解液（強）的主要成分為50mM Tris(pH7.4)，150mM NaCl，1%Triton X-100，
1% sodium deoxycholate，0.1%SDS，以及sodium orthovanadate，sodium fluoride，EDTA，
leupeptin等多種抑制劑。可以有效抑制蛋白降解。
用RIPA裂解液裂解得到的蛋白樣品，可以用本公司生產的BCA蛋白濃度測定試劑盒測定蛋白濃度。
由于含有較高濃度的去垢劑，不能用Bradford法測定由本裂解液裂解得到樣品的蛋白濃度。
包裝清單：
| RIPA裂解液（強） | 50ml（-20℃保存） |
| PMSF（100×） | 550ul（-20℃保存） |
| 使用說明書 | 1份 |
使用說明：
取出裂解液，待融化后顛倒混勻數次，適量分裝凍存。
在使用前取出PMSF(100mM)，按比例加入（使其zui終濃度為1mM）混勻，立即使用。
1、培養細胞：
（1）貼壁細胞：去除培養液，用PBS、生理鹽水或無血清培養液洗2-3遍
（如血清中的蛋白沒有干擾，也可以不洗）。
按6孔板每孔加入100-200ul的比例加入裂解液。用槍吹打數下，使裂解液和細胞充分接觸。
通常裂解液接觸細胞數秒后細胞就會被裂解。
（2）懸浮細胞：收集培養細胞，離心去除培養液，用PBS、生理鹽水或無血清培養液洗2-3遍
（如血清中的蛋白沒有干擾，也可以不洗），
用手指把細胞用力彈散，按6孔板每孔細胞加入100-200ul的比例加入裂解液。
如果細胞數量較大，應按50-100萬細胞/管分裝或根據細胞數量按比例增加裂解液。
用手指輕彈管底以促進裂解液和細胞充分接觸，裂解*時應無明顯的細胞顆粒。
裂解物經10,000-14,000g離心3-5min，取上清，即可進行后續的PAGE、Western、
免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
裂解液用量說明：通常6孔板每孔細胞加入100微升裂解液已經足夠，
但如果細胞密度非常高可以適當加大裂解液的用量到150微升或200微升。
2、組織樣品
取Ep管，分別稱重標記，把組織剪切成小塊裝入Ep管中，稱重。
按每20mg組織加100-200ul的比例加入裂解液（如裂解不*，
可以適當增加用量；如需要的蛋白樣品濃度較高，可以適當減少用量）。
用手握式電動組織細胞勻漿器勻漿約1min或直至充分裂解。
10,000-14,000g離心3-5min，取上清，即可進行后續的PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
如果組織樣品本身非常細小，如淋巴細胞，可直接加入裂解液，通過振蕩（Vortex）以使樣品裂解*。
保存條件：
PMSF需-20℃保存，裂解液若經常使用，可于4℃保存至少三個月。若長期保存，建議置于-20℃，可保存一年。
裂解液中含有少量SDS，溫度低會有沉淀析出，屬于正常現象，使用時37℃加熱溶解即可。
注意事項：
1、為獲得*的實驗效果，可適當分裝使用，以盡量避免反復凍融。
2、PMSF應現用現加。
3、裂解蛋白的所有步驟都需在冰上或4℃進行。
4、蛋白酶抑制劑均有較高的毒性，為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。
一旦直接接觸，請立即用流水沖洗，再向醫療保健結構咨詢。
常見問題分析：
細胞加入RIPA裂解液冰浴裂解后，離心,發現在液面附近有絮狀物產生，是什么原因？
答：一般是因為細胞裂解不*造成的。
改善方法：
（1）加大裂解液的量和裂解時間。
（2）加入裂解液后冰浴稍微超聲處理，使其裂解*。
一般來說，如果細胞裂解后變得澄清、不粘稠，這個時候再離心，就不會出現絮狀物了。
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