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PCR技術(shù)專題:反向PCR (inverse-PCR)實(shí)驗(yàn)步驟

2013-11-20  閱讀(1425)

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inverse-PCR是克隆插入段側(cè)翼序列非常有效的方法。通常采用的Tail-PCR假陽性太多,而Inverse-PCR一般只要有特異條帶,基本上就是目的段。

基本步驟如下:

1、反向PCR(Inverse PCR)原理:反向PCR是克隆T-DNA插入位點(diǎn)側(cè)翼DNA序列非常有效的方法。

a. 選擇合適的限制性內(nèi)切酶位點(diǎn)。并在T-DNA的邊界(左邊界、右邊界均可)和酶切位點(diǎn)附近設(shè)計(jì)引物P1、P2;

b. 回收DNA,T4連接酶連接,使酶切后的DNA段環(huán)化;

c. 回收連接后的DNA,用引物P1、P2做PCR,就可擴(kuò)增到兩端為T-DNA插入序列,中間為側(cè)翼序列的段。

2、限制性內(nèi)切酶消化:選擇合適的限制性內(nèi)切酶,基因組一定要切成彌散性的條帶。在酶切之前,應(yīng)對(duì)基因組DNA定量。

根據(jù)T-DNA的左邊界序列選擇合適的酶切位點(diǎn)EcoRI,BamHI和HindIII/PstI,并在酶切位點(diǎn)上游附近設(shè)計(jì)引物Z1,Z2,Z3和Z4,然后用這些內(nèi)切酶分別消化基因組DNA,酶切體系如下:

 

Buffer for EcoR I2μl
Genomic DNA3μl
EcoR I0.5μl (10u/μl)
ddH2O14.5 μl
 20μl

37度 ,電泳檢測(cè)酶切效果。

3、回收DNA

① 將酶切產(chǎn)物轉(zhuǎn)到1.5ml離心管中,用ddH2O洗滌干凈,并稀釋到250μl;

② 加入等體積的酚和氯仿(V:V=1:1),渦旋混勻,室溫靜置1min;

③ zui大速度(13, 000 rpm)離心1min;

④ 將上清移到另一管中,加入等體積的氯仿,渦旋混勻,室溫靜置1min;

⑤ zui大速度(13, 000 rpm)離心2min;

⑥ 將上清移到另一管中,加入2.5倍體積的-20℃預(yù)冷的無水乙醇,0.1倍體積的3M 乙酸鈉(pH=5.2),輕輕振蕩混勻,室溫靜置5min;

⑦ 4℃zui大速度(13, 000 rpm)離心10~15min;

⑧ 棄上清,盡量除去管壁上的液體;

⑨ 加入1ml -20℃預(yù)冷的70%乙醇,輕輕顛倒幾次。zui大速度(13, 000 rpm)離心5min;

⑩ 除去乙醇,在超凈臺(tái)上平放,將管壁上的乙醇揮發(fā)掉,20~40μl ddH2O溶解。-20℃保存。

4、連接。體系如下:

 

DNA2μl
10×buffer10μl
T4 ligase1μl
ddH2O87μl
 100μl

12-14℃   overnight

連接體系比較大,而DNA含量比較低,不需加入PEG4000,這樣可以促進(jìn)分子內(nèi)的連接,減少分子間的連接。試驗(yàn)中我們采取蹇文嬰等(2002)的方法(12-14℃連接48h)。連接完成后,65℃ 水浴10min滅活。按上述3.抽提回收,溶解于40μl ddH2O中。

然后就可以用回收的鏈接段做PCR了。

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