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一般細胞長至80%-90%密度則需要傳代消化，貼壁細胞傳代前，需要把細胞用消化試劑從培養容器表面解離出來，細胞得以分離成單個懸液傳代至含新鮮培養基的新容器內。
細胞消化常用方法 酶消化法 胰酶。這是用得最多的。一般濃度在0.25-0.5%。作用時間根據細胞種類、作用溫度等因素而變化很大，從幾分鐘到幾十分鐘不等。 0.25%的胰酶作用于單層貼壁的細胞，在37度條件下，一般消化1-5分鐘就足夠了。終止是用血清。主要作用于細胞間。配制時不能用含鈣、鎂的平衡液，否則影響活性。保存于-20度。
不破壞細胞表面分子，僅與CAMs螯合，因此，如果檢測細胞表面分子的話，盡量，甚至是一定不要用酶消化法。 EDTA。一般濃度在0.02%左右。作用于細胞與間質，對細胞間也有一定作用。注意，它能顯著影響pH值，而且在弱堿性條件下才易溶。因此，配制時應調節好酸堿度。它不能被終和。因此，消化下來的細胞要洗一遍。
直接吹打或用細胞刮子將細胞刮下來。
細胞消化液
1、在顯微鏡下觀察細胞 ，當細胞融合度達到 90%，即可傳代。 2、在超凈臺/安全柜中，吸走培養瓶中舊的培養液，加入 PBS 溶液洗一次，加入細胞消化液使之*覆蓋皿/瓶底。 3、室溫孵育 4-5 分鐘或 37℃孵育 2-3 分鐘（不同細胞類型消化時間略有差異），顯微鏡下觀察到大 部分細胞邊緣開始脫離皿/瓶底。 4、加入與消化液等倍體積細胞培養基，用移液器輕輕吹打瓶壁上未*脫離的細胞，并輕輕吹打混 勻，使細胞*分散。 5、將細胞懸液轉移到離心管中，1200 rpm 離心 3 min。 6、棄上清，加入對應細胞培養液，重懸細胞，按比例進行傳代，均勻鋪在培養皿/瓶中，置于 37℃， 5%CO2 條件下培養。
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