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技術(shù)文章

大鼠神經(jīng)元細胞的分離和培養(yǎng)實驗

閱讀:592          發(fā)布時間:2018-12-13

實驗材料    母鼠
試劑、試劑盒    BSS
儀器、耗材    無菌器械顯微鏡
實驗步驟    
1. 殺死懷孕 18 天母鼠(常用過量 CO2 使其窒息),用無菌器械取出胚胎,放在無菌的培養(yǎng)皿中。

2. 取下胚胎的頭,放在盛有 4 ml 不含 Ca2+ 和 Mg2+ 的平衡鹽溶液(BSS)的培養(yǎng)皿中。

3. 從頭顱骨上取下腦,放在 35 mm 培養(yǎng)皿中的 BSS 液滴上,培養(yǎng)皿中半裝滿 Paraplast(Sigma)。

4. 在顯微鏡下剝離腦膜,取下海馬體,放在裝有 BSS 的 35 mm 培養(yǎng)皿中。

5. 海馬體在新鮮配制的 0.25% 胰酶 BSS 溶液中 37℃ 孵育 15 分鐘。

6. 小心吸掉胰酶溶液,加入 5 ml BSS,層流柜中室溫放置 5 分鐘。重復此步兩次或更多次,后加入 2 ml BSS。

7. 首先用普通巴斯德吸管分離細胞,然后換用一支用火燒平、內(nèi)徑縮小一半的吸管。

8. 計數(shù)細胞,確定細胞密度。

9. 所需數(shù)目的細胞懸浮于接種培養(yǎng)基中,接種培養(yǎng)皿中 poly-L-lysine 預處理的蓋玻片。如果用于生化實驗,細胞直接接種 poly-L-lysine 處理的培養(yǎng)皿。


10. 2~4 小時后,蓋玻片轉(zhuǎn)移至含有單層神經(jīng)膠質(zhì)的培養(yǎng)皿中,培養(yǎng)皿中是維持培養(yǎng)基。

11. 每周更換 3 ml 培養(yǎng)液。

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