詳細介紹
本產品是基于 BCA 法(bicinchoninic acid,二奎啉甲酸法)蛋白檢測原理開發的蛋白質濃度測定產品,BCA 法跟 Lowry 法的*步*相同,就是在堿性條件下,藍色的 Cu2+被蛋白質還原成紫色的 Cu+。此反應類似 Cu2+與 Biuret(NH2-CO-NH-CO-NH2,雙縮尿)發生的反應,故又叫 Biuret 反應(Biuret反應本省就可以測定蛋白質濃度,目前仍然是醫院血液蛋白定量的方法)
第二步,Cu+與 BCA 發生反應形成水溶性的紫色化合物,通過分光在 562 nm 處測定紫色化合物的量就可以精確定量蛋白質濃度。BCA 檢測靈敏度比 Biuret 反應高 100 倍左右。
BCA法蛋白定量試劑盒產品特點
此方法的特點如下。
1. 對各種常見的去污劑不敏感,但對 Cu 的還原劑和螯合劑比較敏感。
2. 比 Lowry 法更加簡單快捷,45 分鐘內完成測定。
3. 試劑穩定,室溫可以放置兩年。工作液 1 天內有效。
4. 線性范圍在 20~2000 µg/mL。如果需要范圍在 0.1-10ug/mL,需要選用超敏 BCA。
5. zui小測量體積為 1-20 uL。
6. 終產物穩定,變異系數遠小于考馬斯亮藍法蛋白定量。
7. 可以檢測zui短到雙肽,而 Bradford 法需要一定大小的蛋白質。
8. 有常規(試管)和微量(96 孔板)兩種檢測模式。
BCA法蛋白定量試劑盒使用方法 一:96 板操作模式
1、 取一塊 96 孔板,先進行編號(編號可以根據樣品數增加),并按照下表加入BSA 標準,待測樣品和溶解待測樣品的緩沖液(可以用水替代):
2、 計算 BCA 工作液需要量:根據樣品數量(包括制備標準曲線的樣品的數量)和每個樣品需要 0.2 mL BCA 工作液的比例,計算所需 BCA 工作液的用量,然后加上 10%損耗作為實際需要配制的量。例如:計算出需要 5mL 工作液,實際按不少于 5.5 mL 的量配制。
3、 配制 BCA 工作液:按 50 體積溶液 A 加 1 體積溶液 B(50:1)的比例將二者充分混合,所得溶液即 BCA 工作液。比如:5 ml 溶液 A + 100 µl 溶液B。
注意:取用溶液 A 和溶液 B 前需要充分搖勻,溶液 B 非常容易形成沉淀,需要 65℃加熱溶解后才能使用。當把溶液 B 剛加入到溶液 A 中時,zui初會出現淡綠色沉淀,輕微晃動沉淀即會消失,工作液zui后成綠色,可以室溫放置 12 天,但需要將容器的蓋子擰緊。
4、 將 10 倍體積(20μL 的 10 倍體積即 0.2 mL)的 BCA 工作液加入到各孔中并混勻。也可把 96 孔板放在振蕩器上振蕩 30 秒混勻。
5、 37℃放置 30 分鐘。
6、 冷至室溫,10 分鐘內完成后續測定,否則化學反應還在繼續進行,使光吸收值慢慢升高,每 10 分鐘會升高 2.5%左右。
7、 在 562 nm 下比色測定樣品的光吸收。如酶標儀沒有 562 nm 的設定,可用接近的波長檢測,如 570 nm。
8、 將編號為 0 號的樣品(對照)的讀數從其余所有樣品(包括 0 號樣品,其讀數變成零)中扣除。
9、 以 0-7 號樣品的 BSA 含量(μg,見上表zui右行)為橫坐標,以樣品的吸光值為縱坐標,繪出 BSA 的標準曲線。
10、再將待測樣品的吸光值(減去 0 號樣品的讀數后的值)標在標準曲線上,其在橫坐標上對應的蛋白含量(μg)就是待測樣品中的蛋白質含量,除以樣品稀釋液總體積(20 μL),乘以樣品稀釋倍數即為樣品濃度(μg/μL)。
二:試管測定模式
1、 基本操作同上,只是操作改在編號的玻璃試管中進行,同時 BSA 標準品(2ug/uL)的使用量從低到高改為 0、5、10、20、40、60、80、100uL,樣品的總體積從 20uL 改為 100uL,BCA 工作液的用量從每個樣品 0.2 mL改為 2 mL。
三:注意事項
1、 BCA 法測定蛋白濃度時,吸光度會隨著時間的延長不斷加深。并且顯色反應會因溫度升高而加快。所以,如果蛋白質濃度較低,可以改在 60℃孵育 30分鐘或更長。
2、 待測樣品濃度在 20~2000 微克/毫升濃度范圍內有較好的線性關系。
3、 在一定濃度范圍內 BCA 法測定蛋白濃度不受下列化學物質的影響:
4、 本方法受樣品中螯合劑和還原劑的影響,所以需確保 EDTA 濃度不高于10mM,二硫蘇糖醇不高于 1mM,β-巰基乙醇不高于 1mM,沒有任何EGTA,否則建議使用 Bradford 蛋白濃度測定試劑盒(CAT#:80815)。
相關產品 超敏型 BCA 法蛋白定量試劑盒