Feulgen反應顯示細胞中DNA

時間：2023/1/13閱讀：2474

簡介

Feulgen反應由Feulgen在1924年發明，是一種傳統的、也是最為經典的通過化學染色來特異性顯示細胞中DNA的方法。

原理

Feulgen反應顯示細胞中DNA的基本原理是首先采用稀酸作用于DNA，使其脫去嘌呤堿，暴露出游離醛基，該醛基與Schiff試劑反應生成紫紅色產物，細胞中存在有DNA的部位即呈現紫紅色陽性反應。如圖3-1中所示，堿性品紅是紅色物質，能與產生SO2的試劑作用形成無色產物，即Schiff試劑，它可以與DNA水解釋放出的醛基結合而氧化為紫紅色化合物。

用途

Feulgen 反應顯示細胞中 DNA 既可檢測細胞或組織中 DNA 的存在部位及分布，也可利用其顯色強度與 DNA 含量成正比的特性，用于對細胞或組織中的 DNA 含量進行測定。由于反應對含有 DNA 的核結構顯示細致、清晰，染色穩定，有利于鑒別不同核結構和分化程度的細胞，如白血病細胞等。

材料與儀器

器材：

尖頭鑷子、染色缸、蓋片、載玻片、吸管、吸水濾紙、普通光學顯微鏡、恒溫水浴箱、CO2培養箱、HeLa人宮頸癌上皮細胞。

試劑：

①Hanks液

（1）原液甲NaCl 160 g ，KC18 g ，MgSO4•7H2O2 g ；MgCl2•6H2O2 g ，溶于800 mL 蒸餾水中。CaCl2（無水）2.8 g ，溶于100 mL 蒸餾水中。將兩種液體混合后，加水至1000 mL ，用濾紙濾過，再加2 mL 氯仿防腐，置4 ℃ 冰箱備用。

（2）原液乙 Na2HPO4•12H2O3.04 g ，KH2PO41.2 g ，葡萄糖20.0 g ，溶于800 mL 蒸餾水中，用濾紙過濾，然后加0.5％酚紅80 mL ，再加水至1000 mL ，最后加入2 mL 氯仿防腐，置4 ℃ 冰箱備用。

（3）使用液甲乙兩液各1 份，雙蒸水18 份，混勻分裝，經101 bf ／in （68.9 kPa ）15 min 高壓滅菌后置4 ℃ 冰箱中保存。臨用前用無菌的5.6％NaHCO3 調至所需 pH 值。）

②1 mol ／L 鹽酸

③Schiff 試劑

（堿性品紅0.5 g 加入100 mL 煮沸的蒸餾水中，持續煮沸5 min ，并隨時攪拌，使之充分溶解。然后將其冷卻到50 ℃ ，過濾到棕色瓶中，加1 mol ／L HC110 mL ，冷卻至25 ℃ 時加入1 g 無水亞硫酸氫鈉（NaHSO3），需充分振蕩后，避光過夜。次日取出（呈淡黃色），加0.25 g 活性炭劇烈振蕩1 min ，過濾后即得 Schiff 試劑，此時溶液應完-全無色。避光、低溫、密封保存。用前應事先取出使其恢復至室溫。）

④ Carnoy 固定液（甲醇:冰醋酸＝3:1）

⑤0.5％亮綠

⑥蒸餾水

⑦70％乙醇

⑧80％乙醇

⑨95％乙醇

⑩無水乙醇

?二甲苯

?中性樹膠

步驟

Feulgen 反應顯示細胞中 DNA 的基本過程可分為如下幾步：

A.將培養的 HeLa 細胞接種于蓋片，24～48 h 后生長為單層。

B.取細胞蓋片1 張，用 Hanks 液（pH 7.2～7.4）漂洗3 次，吸水濾紙吸干液體。

C.放入 Carnoy 固定液中固定30 min 。

D.蒸餾水洗3 次。

E.將蓋片置于1 mol ／L 鹽酸中，60 ℃ 水浴水解10 min 。

F.蒸餾水洗1 次。

G.將蓋片移入 Schiff 試劑中，暗處反應30 min 。

H.流水沖洗5 min 。

I.蒸餾水洗3 次。

J.0.5％亮綠復染1～3 min 。

K.70％乙醇→80％乙醇→95％乙醇→無水乙醇梯度脫水。

L.蓋片浸入二甲苯中透明5 min 。

M.滴1 滴中性樹膠于載玻片上，將蓋片細胞面朝下封片。

N.鏡下觀察。

注意事項

1.本實驗的關鍵步驟是有效地控制DNA水解的程度，包括稀酸的濃度，水解的時間、溫度等。水解不足，會使游離醛基的暴露不完-全，反應變弱；水解過度，會導致 DNA 異常降解，也同樣使反應變弱，染色深度下降，嚴重時出現陰性反應。一般的水解時間應控制在10～15 min ，同時應考慮不同標本材料的影響。

2. Schiff 試劑的質量也是影響實驗結果的重要因素，試劑暴露于空氣中易被氧化而變成紅色，使試劑失效。操作及保存中不宜過多暴露于空氣，并應注意避光。

3.本實驗采用蓋片培養細胞，因此在整個操作過程中，應注明蓋片的正反面，防止破壞細胞面，尤其在進行流水沖洗步驟時，應避免水流直接接觸細胞面。

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