一、物理破碎法
1. 超聲波破碎法
利用超聲波的空化效應和機械振動破壞細胞膜，釋放蛋白質。適用于細菌、培養細胞等，需控制功率和時間以防止蛋白質變性。
2. 液氮研磨法
通過液氮冷凍組織后研磨成粉末，結合裂解液釋放蛋白質，常用于植物或動物組織（如腦、脊髓）。
3. 高壓破碎法
通過高壓迫使細胞破裂，適用于微生物和大規模提取。
二、化學溶解法
1. 洗滌劑裂解法
使用SDS、Triton X-100等去污劑溶解細胞膜，適用于細胞和組織的快速裂解。
2. 尿素/硫脲變性法
高濃度尿素（8-9 M）破壞蛋白質非共價鍵，結合CHAPS去污劑提取疏水性蛋白，常用于雙向電泳樣本制備。
3. 三氯醋酸-丙酮沉淀法
通過TCA和丙酮沉淀蛋白質，去除脂類及小分子雜質，適用于植物和富脂樣本。
三、鹽析與沉淀法
1. 硫酸銨鹽析法
通過調節鹽濃度使蛋白質沉淀，操作簡單且成本低，適合初步純化。
2. 有機溶劑沉淀法
使用乙醇、丙酮等降低蛋白質溶解度，常用于去除雜蛋白或濃縮樣本。
四、層析與過濾法
1. 親和層析法
利用目標蛋白與配體（如Ni-NTA樹脂、抗體）的特異性結合進行純化，選擇性高但成本較高216。
2. 凝膠過濾法
基于分子量差異分離蛋白質，適用于去除小分子雜質或分離不同大小的蛋白復合物。
五、特殊場景提取法
1. 線粒體蛋白提取
通過差速離心分離線粒體，結合裂解液（含甘露醇、EDTA）提取膜蛋白，適用于亞細胞結構研究。
2. 細菌蛋白提取
使用溶菌酶或SDS裂解細菌細胞壁，結合離心去除碎片，常用于重組蛋白表達分析。
3. 雙向電泳前處理法
針對雙向電泳優化，采用尿素/硫脲裂解液和還原劑（DTT）保持蛋白質溶解性，減少電荷異質性。
六、實驗優化建議
樣本類型：植物組織需液氮研磨和TCA沉淀；動物組織推薦凍融循環或勻漿法。
抑制劑使用：裂解液中需添加蛋白酶抑制劑（如PMSF、亮肽素）和還原劑（DTT）防止降解。
溫度控制：全程冰上操作，避免蛋白質變性或酶活性損失。
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