線粒體復(fù)合體Ⅱ試劑盒說(shuō)明書(shū)

分光光度法 25 管/24 樣

測(cè)定意義

線粒體復(fù)合體Ⅱ又稱琥珀酸-輔酶 Q 還原酶，廣泛存在于動(dòng)物、植物、微生物和培養(yǎng)細(xì)胞的線粒體中，催化琥珀酸氧化生成延胡索酸，同時(shí)輔基 FAD 還原為 FADH2，后者進(jìn)一步還原氧化型輔酶 Q 生成還原型輔酶 Q，是呼吸電子傳遞鏈的支路。

測(cè)定原理

復(fù)合體Ⅱ的催化產(chǎn)物還原型輔酶 Q 可進(jìn)一步還原 2,6-二氯吲哚酚，2,6-二氯吲哚酚在 605nm 有特征吸收峰，通過(guò)檢測(cè) 2,6-二氯吲哚酚的減少速率來(lái)計(jì)算該酶活性。

需自備的儀器和用品

可見(jiàn)分光光度計(jì)、臺(tái)式離心機(jī)、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1mL 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

試劑組成和配制

試劑一：25mL×1 瓶，-20℃保存；

試劑二：5mL×1 瓶，-20℃保存；

試劑三：0.5 mL×1 支，-20℃保存；試劑四：液體 25mL×1 瓶，4℃保存；試劑五：粉劑×1 支，-20℃保存；試劑六：粉劑×1 支，-20℃保存；試劑七：液體 2.5mL×1 瓶，4℃保存；

樣本的前處理：

組織、細(xì)菌或細(xì)胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離：

1、準(zhǔn)確稱取 0.1g 組織或收集 500 萬(wàn)細(xì)胞，加入 1mL 試劑一和 10uL 試劑三，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。

2、將勻漿 600g，4℃離心 5min。

3、棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11100g，4℃離心 10min。

4、上清液即為除去線粒體的胞漿蛋白，可用于測(cè)定從線粒體泄漏的復(fù)合體Ⅱ（此步可選做）。

5、步驟④中的沉淀即為線粒體，加入 200uL 試劑二和 2uL 試劑三，超聲波破碎（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10 秒，重復(fù) 30 次），用于復(fù)合體Ⅱ酶活性測(cè)定。

測(cè)定步驟：

1、分光光度計(jì)預(yù)熱 30min 以上，調(diào)節(jié)波長(zhǎng)至 605nm，蒸餾水調(diào)零。

2、樣本測(cè)定

（1）工作液的配制：臨用前把試劑五和試劑六轉(zhuǎn)移到試劑四中混合溶解，置于 37℃（哺乳動(dòng)物）或 25℃（其它物種）孵育 5min。

（2）在 1mL 玻璃比色皿中加入 40μL 樣本、100μL 試劑七和 800μL 工作液，立即混勻，記錄 605nm 處初始吸光值 A1 和 2min 后的吸光值 A2，計(jì)算ΔA=A1-A2。

復(fù)合體Ⅱ活力單位的計(jì)算

（1） 按樣本蛋白濃度計(jì)算

單位的定義：每 mg 組織蛋白每分鐘消耗 1 nmol 2,6-二氯吲哚酚定義為一個(gè)酶活力單位。

復(fù)合體Ⅱ活力(U/mg prot)=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(V 樣×Cpr) ÷T=559×ΔA÷Cpr

此法需要自行測(cè)定樣本蛋白質(zhì)濃度。

（2） 按樣本鮮重計(jì)算

單位的定義：每 g 組織每分鐘消耗 1 nmol 2,6-二氯吲哚酚定義為一個(gè)酶活力單位。

復(fù)合體Ⅱ活力(U/g 鮮重)=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(W× V 樣÷V 樣總) ÷T=113×ΔA÷W

（3） 按細(xì)菌或細(xì)胞密度計(jì)算

單位的定義：每1 萬(wàn)個(gè)細(xì)菌或細(xì)胞每分鐘消耗1 nmol 2,6-二氯吲哚酚定義為一個(gè)酶活力單位。復(fù)合體Ⅱ活力(U/10⁴ cell)=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(500×V 樣÷V 樣總) ÷T =0.226×ΔA V 反總：反應(yīng)體系總體積，9.4×10^-4 L；ε：2,6-二氯吲哚酚摩爾消光系數(shù)，2.1×10⁴ L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V 樣：加入樣本體積，0.04 mL；V 樣總：加入提取液體積，0.202 mL；T：反應(yīng)時(shí)間，2 min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/mL；W：樣本質(zhì)量，g；500：細(xì)胞或細(xì)菌總數(shù)，500 萬(wàn)。