*部分 基因組DNA的提取

這一步沒有懸念，*可以購買供細胞或組織使用的DNA提取試劑盒，如果實驗室條件成熟，自己配試劑提取*可以。DNA比較穩定，只要在操作中不要使用暴力，提出的基因組DNA應該是完整的。

此步重點在于DNA的純度，即減少或避免RNA、蛋白的污染很重要。因此在提取過程中需使用蛋白酶K及RNA酶以去除兩者。

使用兩者的細節：

1、蛋白酶K可以使用滅菌雙蒸水配制成20mg/ml；

2、RNA酶必須要配制成不含DNA酶的RNA酶，即在購買市售RNA酶后進行再處理，配制成10mg/ml。否則可能的后果是不僅沒有RNA，連DNA也被消化了。兩者均于-20℃保存。

驗證提取DNA的純度的方法有二：

1、紫外分光光度計計算OD比值；

2、1%-1.5%的瓊脂糖凝膠電泳。

第二種方法優于*種方法，這種方法*可以明確所提基因組DNA的純度，并根據Marker的上樣量估計其濃度，以用于下一步的修飾。

第二部分 亞硫酸氫鈉修飾基因組DNA

如不特別指出，所用雙蒸水（ddH₂O）均經高壓蒸汽滅菌。

1、將約2ugDNA于1.5mlEP管中使用ddH₂O稀釋至50μl；

2、加5.5ul新鮮配制的3M NaOH；

3、42℃水浴30min；

以下步驟在水浴期間配制：

4、10mM 對苯二酚（氫醌），加30μl至上述水浴后混合液中（溶液變成淡黃色）；

5、3.6M 亞硫酸氫鈉（Sigma，S9000），配制方法：1.88g亞硫酸氫鈉使用ddH₂O稀釋，并以3M NaOH滴定溶液至PH 5.0，zui終體積為5ml。這么大濃度的亞硫酸氫鈉很難溶，但加入NaOH后會慢慢溶解，需要有耐心。PH一定要準確為5.0。加520μl至上述水浴后溶液中；

6、EP管外裹以鋁箔紙，避光，輕柔顛倒混勻溶液；

7、加200μl石蠟油，防止水分蒸發，限制氧化；

8、50℃避光水浴16h。

這一步需要注意的細節：

1、基因組DNA的量不需十分，寧多勿少，因為在以后純化回收步驟中會有丟失，且此方法修飾zui多可至4μg；

2、所有試劑均須新鮮配制，所以配液的技術要過關，既要快，又要；

3、亞硫酸氫鈉溶液呈強酸性，一定用堿將PH調制5.0，否則PH不合適會影響后續純化吸收；

4、水浴達16小時，雖可以短至8小時，但后者修飾會有不*。