獲得ATCC菌種的方法主要有擔孢子彈射分離法、組織分離法和段木分離法。
    1．孢子彈射法。這是利用新鮮的、成熟的子實體自動彈射出擔孢子來獲得純菌種的方法。取色白、朵大、無病蟲害的新鮮銀耳作為種耳。
    用無菌水漂洗銀耳數次，再用無菌紗布或吸水紙，把銀耳表面的水分吸干。因為耳片表面若有薄水層，便會影響銀耳擔孢子的彈射，并容易污染上雜菌。再把種耳切一小塊，以放入三角瓶或放入試管中不會碰到瓶壁或管壁為度，隨后用不銹鋼小鉤鉤住小耳片，迅速懸掛在三角瓶或試管內，同時注意勿使種耳碰到培養基表面，以防污染雜菌，塞上棉塞，然后放在20-25℃條件下，經24小時，從耳片上彈射出來的擔孢子，落在光滑的培養基表面上形成一個霧狀的孢子印。此時，在無菌箱或無菌室中，將懸于瓶內的耳片取出，再塞上棉塞，移到20-25℃的室中培養，經2-3天，培養基表面就會出現許多乳白色、糊狀的小菌落。
    此系銀耳的酵母狀分生孢子。當培養基上出現酵母狀分生孢子的菌落時，為了防止和減少污染，應盡快地進行提純，即挑取少許沒有雜菌的銀耳酵母狀分生孢子，移入新的試管中進行培養。不管銀耳擔孢子或酵母狀分生孢子都不容易萌發成菌絲，所以直接用于時有困難，目前已較少采用。不過，為了獲得銀耳有性繁殖的后代，必須采用擔孢子分離法，并使之萌發成單核菌絲，然后進行配對實驗。
    2．組織分離法。和香菇、平菇不同，銀耳組織分離法比較難操作，實用意義也不大。因為耳片一旦膠質化之后，就不容易再長出菌絲，況且段木種植的或野生的銀耳，暴露在外界的生長時間很長，耳片上必定會附著各種雜菌，組織分離時既不容易把附著的雜菌洗掉，又不容易用藥品進行表面的滅菌處理，且容易導致銀耳和條菌同歸于盡。只有位于樹皮和木質部之間的肥厚的耳基比較容易進行組織分離，可以獲得銀耳的純菌絲。不過用耳基分離來的銀耳純菌絲常是鵝黃色的或橙黃色的，不是純白的，ATCC菌種生長的速度也比較慢，效果也不太理想。

Glycyrrhizic acid 甘草酸 甘草甜素;甘草皂苷 1405-86-3 HPLC≥98% 20mg/支

Glycyrrhetinic acid 甘草次酸 1449-05-4;471-53-4‏ HPLC≥98% 20mg/支

Glycyrrhizic acid ammonium salt 甘草酸單銨鹽 甘草酸銨 53956-04-0 HPLC≥98% 20mg/支

Liquiritin 甘草苷 甘草甙 551-15-5 HPLC≥98% 20mg/支

Isoliquiritin 異甘草苷 異甘草甙 5041-81-6 HPLC≥98% 10mg/支

Liquiritigenin 甘草素 甘草醇 578-86-9 HPLC≥98% 20mg/支

Rhein 大黃酸 478-43-3 HPLC≥98% 20mg/支

Emodin 大黃素 朱砂蓮甲素 518-82-1 HPLC≥98% 20mg/支
ATCC菌種