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理性闡述qPCR實驗的Ct值的合理范圍

來源:上海雅吉生物科技有限公司   2018年07月16日 09:03  

理性闡述qPCR實驗的Ct值的合理范圍。(附Ct值過大或過小的解決方法)

 

Ct值是什么?

Ct值具有什么樣的作用?

Ct值的正常范圍是多少?

Ct值太大或者太小的原因?

 

Ct值是熒光定量PCR重要的結果呈現形式。它被用于計算基因表達量差異或者基因拷貝數。那么熒光定量的Ct值多大可被認為是合理?如何保證Ct值的有效范圍呢?今天就讓小編來為大家解答這個問題。

Ct值是什么?

qPCR擴增過程中,擴增產物的熒光信號達到設定的熒光閾值時的所對應的擴增循環數(Cycle Threshold)。C代表CycleT代表Threshold。簡單講,Ct值就是qPCR中起始模板擴增達到一定產物量時,所對應的循環數。所謂“一定產物量”后續作進一步解釋。

Ct值有什么作用?

1.指數擴增、模板量與Ct值的關系

理想情況下,qPCR中的基因經過一定的循環數被指數擴增而積累,擴增循環數和產物量之間的關系是:擴增產物量=起始模板量×(1+En)循環個數。然而qPCR反應并不是一直處于理想情況下,當擴增產物量達到“一定產物量”時,此時循環個數為Ct值,處于指數擴增時期。Ct值與起始模板量的關系:模板的Ct值與該模板的錨點起始拷貝數的對數存在線性關系。起始模板量濃度越高,Ct值越小;起始模板量濃度越低,Ct值越大。

 

2.擴增曲線、熒光閾值與一定產物量

qPCR擴增產物量是以熒光信號的形式直接呈現,也就是擴增曲線。在PCR早期,擴增處于理想情況下,循環數較少,產物積累少,產生熒光的水平不能與熒光本底背景明顯地區別,之后熒光的產生增加進入指數期。可以在PCR反應剛處于指數期的某一點上來檢測PCR產物的量,以此作為“一定產物量”,并且由此來推斷模板初的含量。因此,一定產物量對應的熒光信號強度,也就是熒光閾值。

PCR的后期,擴增曲線不再呈現指數擴增,進入線性期和平臺期。

 

3.Ct值的重現性

PCR循環在到達Ct值所在的循環數時,剛剛進入真正的指數擴增期,此時微小誤差尚未放大,因此Ct值的重現性*,即同一模板不同時間擴增或同一時間不同管內擴增,得到的Ct值是恒定的。

Ct值的范圍?

1.擴增效率En

PCR擴增效率是指聚合酶把待擴增基因轉變生成擴增子的效率。由1DNA分子轉變生成2DNA分子時的擴增效率為100%。擴增效率常用En表示。為了方便后續文章的分析,簡要介紹下影響擴增效率的因素。

影響因素

解釋

如何判定?

A.PCR抑制劑

1.模板RNA中可能含有抑制PCR反應的物質,如蛋白質或去污劑等。

2.反轉錄后的cDNA中含有高濃度的模板RNA和反轉錄試劑成分,也可能對后續PCR存在抑制。

1.可通過測定A260/A280A260/A230比值或RNA電泳,判斷是否存在污染。

2.反轉錄后cDNA是否按照一定比例進行稀釋。

B.引物設計不合理

引物不能有效退火

檢查引物是否存在二聚體或發夾結構、存在錯配;有時需注意跨內含子設計。

C.反應程序不合適

1.引物不能有效退火。

2.DNA聚合酶活性未充分釋放,

3.長期高溫,DNA聚合酶活性下降。

1.退火溫度高于引物Tm值。

2.預變性時間太短。

3.反應程序各階段時間過長。

D.試劑未充分混勻或移液誤差

反應體系中,PCR反應成分的局部濃度過高或不均勻,導致PCR擴增不呈指數擴增。

 

E.擴增子長度

擴增子長度太長,超過300bp,擴增效率低。

檢查擴增子長度是否在80bp-300bp之間。

F.qPCR試劑的影響

試劑中DNA聚合酶濃度較低或Buffer中離子濃度非優化,導致Taq酶活力未達強。

標準曲線測定引物擴增效率。

 

2.Ct值的范圍

Ct值的范圍為15-35Ct值小于15,認為擴增在基線期范圍內,未達到熒光閾值。理想情況下,Ct值與模板起始拷貝數的對數存在線性關系,也就是標準曲線。通過標準曲線,擴增效率為100%時,計算出基因單個拷貝數定量的Ct值在35左右,若大于35,理論上模板起始拷貝數小于1,可認為無意義。

對于不同的基因Ct范圍,因起始模板量中基因拷貝數和擴增效率不同,需做出該基因的標準曲線,計算出基因的線性檢測范圍。

 

3.Ct值的影響因素

由擴增循環數和產物量之間的關系:擴增產物量=起始模板量×(1+En)循環個數,可以看出,在理想條件下,起始模板量和En會對Ct值產生影響。模板質量或者擴增效率的差異會造成Ct值偏大或過小。

 

4.Ct值過大或過小

小翊威逼利誘了我公司技術部的牛牛們,總結出Ct值常見的兩類問題的原因和解決方法,以饗讀者。

問題

可能的原因

解決方法

Ct值過大

1.模板濃度低或存在PCR抑制物

2.擴增效率低

1.提高模板濃度;或提高RNA或cDNA稀釋比例;或重新制備模板。

2.降低退火溫度,或選用二步法擴增;組分和體系充分混勻;優化反應程序;或嘗試更換試劑。

Ct值過小

1.模板濃度高

2.NTC和NRC存在污染

3.引物設計不合適

1.減少模板RNA量;或更高比例稀釋cDNA。

2.重新更換所有試劑;或使用UDGase防污染試劑。

3.優化程序,避免非特性擴增。

 

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