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ELISA實驗操作中的成敗細節(jié)

來源:上海雅吉生物科技有限公司   2018年07月16日 13:06  

轉(zhuǎn)載請注明:解螺旋·臨床醫(yī)生科研成長平臺

 

 

 

酶聯(lián)免疫吸附測定(ELISA)因其具有敏感性高、特異性強等優(yōu)點,被廣泛應(yīng)用于臨床檢測中的各種抗原和抗體的測定。盡管ELISA操作簡單,但是小實驗里也蘊含著大文章,ELISA操作各個環(huán)節(jié)對實驗的檢測效果影響較大,稍不注意就會產(chǎn)生假陽性或假陰性的結(jié)果。現(xiàn)在小魚就跟大家818應(yīng)用ELISA應(yīng)該了解的一些常識。

 

ELISA分類及具體過程

 

一般,ELISA可分為以下四大類:直接ELISA、間接ELISA、夾心ELISA、競爭抑制ELISA。其他的ELISA都隸屬于這四類ELISA或由這四類ELISA組合衍生。

 

ELISA的具體操作的視頻鏈接

 

 

 

下面分析ELISA實驗操作中可能影響結(jié)果的原因,并給出相應(yīng)的解決方法。

 

 

樣品收集和保存

 

用于ELISA測定常用的臨床標本是血清(漿)。要注意避免嚴重溶血,因為血紅蛋白中含有具有類似過氧化物活性的血紅素基團,在孵育時很容易吸附于固相,與HRP底物反應(yīng)產(chǎn)生假陽性。

 

樣品采集及血清分離中要注意避免細菌污染,一方面細菌分泌的酶可能對抗原抗體等蛋白產(chǎn)生分解作用,另一方面,細菌的內(nèi)源性酶如大腸桿菌的β-半乳糖苷酶會對相應(yīng)酶作標記的測定方法產(chǎn)生非特異性干擾。

 

樣品應(yīng)該要避免反復(fù)凍融。因反復(fù)凍融所產(chǎn)生的機械剪切力對標本中的蛋白等分子產(chǎn)生破壞作用,從而引起假陰性結(jié)果。另外,樣品混勻時,不要劇烈振蕩,反復(fù)顛倒混勻即可。

 

一般而言,如果在收集樣品的當(dāng)天進行檢測,可將樣品及時儲存在4℃?zhèn)溆茫欢鴮Ω籼煸贆z測的樣本,應(yīng)及時分裝后凍存在-20℃?zhèn)溆茫粢L期保存樣品,將其置于-70℃凍存。

 

 

實驗具體步驟

 

試劑準備

 

在實驗開始前,需將試劑盒從冰箱中拿出來在室溫放置20min,再進行測定,以使試劑盒在使用前與室溫平衡,也可使溫育時反應(yīng)孔內(nèi)的溫度能較快的達到所要求的高度,以滿足測定要求。

 

其次,目前商品中ELISA試劑盒中的洗板液均需在實驗過程中對其所提供的濃縮液進行稀釋配制,因此稀釋時所用的蒸餾水或去離子水應(yīng)該保證質(zhì)量。此外,底物反應(yīng)液應(yīng)該反應(yīng)顯色前進行現(xiàn)配現(xiàn)用。同時,為了保證實驗的均一性,實驗中所有試劑在加樣前必須搖勻。

 

加樣

 

因ELISA的靈敏度較高,則應(yīng)該按規(guī)定將血清稀釋至適當(dāng)?shù)谋稊?shù),以降低非特異性反應(yīng),使特異性的抗原抗體反應(yīng)充分體現(xiàn)出來。

 

加樣品時,單孔用量要求:≥20ul/指標,如需要做2個復(fù)孔則血量≥60ul/指標。如果用量充足,提供50ul/孔/指標。具體用量也需根據(jù)試劑盒的要求而定。

 

吸取樣品時,加樣槍頭不應(yīng)粘附多余的液體;加樣時不可90度向孔中滴加液體,否則會導(dǎo)致液體殘留在吸頭上,加樣不準確。正確加樣方法應(yīng)為45度,吸頭貼著孔壁和液面的交界處加入。

 

 

加樣時速度不可過快,否則無法保證微量加樣的準確性和均一性;要避免樣品加在孔壁上部而產(chǎn)生非特異性吸附。不可將樣品濺出以避免對鄰近孔產(chǎn)生污染。

 

孵育

 

一般,孵育時間與溫度成反比,即溫度越高,所需時間相對較短。常用的孵育溫度為37℃,孵育1-2h。

 

孵育時應(yīng)貼封片或加蓋,避免樣品或稀釋液蒸發(fā),吸附于孔壁,難于清洗。孵育時,反應(yīng)板不宜疊放,以保證各板的溫度都能迅速平衡。同時,應(yīng)嚴格控制孵育時間,避免因時間過長導(dǎo)致緊附于反應(yīng)孔周圍的非特異性結(jié)合。

 

孵育時,要盡量排除“邊緣效應(yīng)”,即96孔板的外周孔顯色較中心孔深。究其原因,是因為96孔板周孔與中心孔的表面或熱力學(xué)特征不同。因此,可采用水浴或在將反應(yīng)溶液加入至板孔中時,將板和溶液均加熱至孵育溫度(37℃)。

 

洗板

 

為了確保ELISA測定的特異性,洗板可清除非特異性結(jié)合物質(zhì),減少背景信號,增加分析的信噪比。

 

手工洗板時,拍板要垂直,避免交叉污染,用力不能過猛,防止抗原抗體復(fù)合物脫離。使用半自動洗板時,應(yīng)經(jīng)常檢查沖洗頭是否通暢,若被雜物堵塞時可用注射器針頭挑出。為了達到較好的洗滌效果,實驗室可采用機器與人工洗滌相結(jié)合的方法,即在機器洗滌后再進行人工洗板1-2次。

 

以HRP作為標記酶的ELISA試劑盒中使用的洗板液一般為含0.05% Tween20的中性PBS,其中,吐溫20的濃度可在0.05%-0.2%之間,高于0.2%時,可使包被在固相上的抗原或抗體解吸附而減低實驗的靈敏度。

 

顯色

 

目前以HRP作為標記酶的商品ELISA試劑盒中,如以TMB為底物,則提供的底物為A和B兩瓶應(yīng)用液;如以O(shè)PD為底物,則試劑盒提供OPD片劑或粉劑,臨用前配制。顯色劑配制后放置時間過長(肉眼可見淺藍色的TMB時)要棄之不用。

 

在加入底物開始顯色反應(yīng)前,是先檢查一下底物溶液的有效性,即可將A和B兩種液各加一滴于清潔的空板孔或eppendorf管中,觀察是否有顯色出現(xiàn),如有,則說明底物已變質(zhì)。

 

顯色反應(yīng)條件一般為37℃或室溫反應(yīng)15-30分鐘。加終止液時,要避免氣泡產(chǎn)生而引起的假陽性。

 

讀板

 

讀板時要保證酶標板清潔,同時也要注意酶標儀的波長是否已調(diào)至合適或所用濾光片是否正確。

 

通常,單波長讀板的測定值一般是指以對顯色具有大吸收的波長如450nm或492nm進行比色測定;而雙波長讀板的測定值一般是敏感波長如450nm的吸光值與非敏感波長下如630nm的吸光值之差,可排除板內(nèi)臟物的影響。

 

同時,由于ELISA測定中單個空白孔的非特異吸收上有一定程度的不確定性,也就是說每次測定或同次測定空白孔位置的不同均有可能得到不同吸光度測定值,故而在ELISA測定比色時,是使用雙波長比色。

 

數(shù)據(jù)結(jié)果分析

 

ELISA的測定結(jié)果可分為兩種:定性測定和定量測定。前者只需確定陰性或陽性即可;后者則需要給具體的數(shù)值。在定量測定中,經(jīng)常要將標準品所獲得的吸光值進行標準曲線的繪制。

 

下面則簡單介紹用excel繪制標準曲線的方法

 

1)輸入相應(yīng)數(shù)據(jù)

 

 

2)選中相應(yīng)數(shù)據(jù)

 

 

3)選擇表格中,菜單欄中的插入|散點圖中個類型

 

 

 

4)選中“圖表工具”中的“快速布局”中fx圖標,即可得到以下圖表。Excel版本較低的可以直接跳到第6)步。

 

 

5)點中坐標軸標題,可做修改。修改后可獲得以下標準曲線。

 

 

6)或者在較低版本的excel中,在“圖表工具”選項中,選擇趨勢線|線性趨勢線。

 

 

7)選中圖表中的趨勢線,右鍵,選擇“設(shè)置趨勢線格式”,在彈出的對話框中,將“顯示公式”勾選上,點擊關(guān)閉,也獲得標準曲線。

 

 

8)可將試驗管中所測的吸光度值代入圖表中的公式Y(jié)=1.001x+0.0171后可得到所求成分的含量,即X的值。

 

ELISA疑難雜癥

 

1)顯色淺,靈敏度低

 

 

 

 

2)假陽性多,本底高甚至花板

 

 

3)重復(fù)性不好

 

 

4)白板

 

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