NK細胞存在于人或動物外周血、脾臟、淋巴結和骨髓中，能殺傷某些腫瘤細胞、病毒感染靶細胞，無需抗原或有絲分裂原刺激，也不依賴抗體或補體，在機體殺傷腫瘤、防御感染及免疫調節中發揮重要作用。LAK是NK或T細胞在體外高劑量IL-2誘導下，獲得能殺傷NK抵抗的腫瘤細胞的功能，在過繼免疫治療腫瘤中已得到廣泛的應用。通過將同位素⁵¹Cr摻入到NK的靶細胞K562（紅白細胞白血病細胞）或LAK的靶細胞Libr（黑色素瘤細胞），按一定細胞比例與效應細胞（NK或LAK）孵育4小時，根據細胞上清中靶細胞被殺傷后所釋放的⁵¹Cr水平計算出殺傷細胞的殺傷活性。

細胞系

FCS RPMI 164051Cr

培養瓶培養板CO2孵箱離心機β-液閃儀γ-計數儀

1.  NK功能效應細胞可取靜止的PBMC，或經不同細胞因子誘導的PBMC。

2.  LAK功能的效應細胞通常將PBMC或腫瘤浸潤淋巴細胞（TIL）或體液（癌性胸腺水）中分離的淋巴細胞（1×10⁶/ml）在含有高劑量IL-2（200~1000 ul/ml）的10%FCS RPMI 1640誘導2~5 d 而成。

二、殺傷試驗
 

  主要有⁵¹Cr 4 h 釋放法和³H-TdR釋放法，前者操作時間短，非常敏感；后者需要無菌操作，所需時間較長。

1.   ⁵¹Cr4h釋放試驗

（1）收獲處于對數生長期的靶細胞（K562、LiBr等），洗滌后調整細胞濃度為2×10⁶/ml

（2）取1×10⁶細胞（0.5 ml），加Na₂⁵¹CrO₄ 100 uCi，37度孵育2~3 h，每15 min 輕輕振搖一次。

（3）用10%FCS RPMI 1640洗滌3次，每次800 rpm、5 min。

（4）重懸細胞濃度1×10⁵/ml。

（5）96孔v型或U型培養板中，每孔加100 ul（1×104細胞），設3個復孔。

（6）每孔加入100 ul 不同細胞濃度的效應細胞，大釋放組加入100 ul 1%Triton X-100；自然釋放組加100 ul *培養基。

（7）200g離心1 min。

（8）37度、CO₂孵箱培養4 h。

（9）200 g 離心1 min。

（10）每孔取出100 ul 上清，β計數儀測定值。

（11）計算：特異性殺傷率（%）=（實驗組cpm-自然釋放cpm）/（對照組-自然釋放cpm）

2.  ³H-TdR釋放試驗
 

（1）收獲處于對數生長期的靶細胞（K562、LiBr等），洗滌后調整細胞濃度為2×10⁶/ml，加³H-TdR 20 uCi。

（2）7度孵育2~3 h。

（3）用10%FCS RPMI 1640洗滌3次，每次800 rpm、5 min，調整濃度為1×10⁵/ml。

（4）96孔U型或平底培養板中，每孔加100 ul（1×10⁴細胞），設3個復孔。

（5）每孔加入100 ul 不同細胞濃度的效應細胞，大釋放組加入100 ul 1%Triton X-100；自然釋放組加100 ul *培養基。

（6）CO₂孵箱培養18~24 h。

（7）每孔取出100 ul 上清，加入胰蛋白酶（終濃度0.15%）和DNA酶（終濃度為0.0125%）

（8）繼續孵育30 min。

（9）用細胞收集儀收獲于玻璃纖維紙上。

（10）烤干后，β計數儀測定值。

（11）計算：特異性殺傷率（%）=（1-實驗組cpm/對照組cpm）×100%

1.  每次試驗取3~4個不同的效應細胞/靶細胞比例，常用效靶比例為100：1、50：1、25：1、12.5：1。

2.  誘導LAK細胞過程中要注意無菌操作。

3.  避免同位素污染。

根據實驗需要，可采用純化的NK細胞作為效應細胞，常用Percoll不連續密度梯度離心純化NK細胞（見表）。
 

1個溶解單位（Lyticunit，LU）為一定效應細胞30%溶解（殺傷）5×10³/靶細胞（K562）的水平。

如需進一步純化LGL，可通過除去具有高親和性羊紅細胞受體細胞（T細胞），因為NK細胞只具有低親和性的綿羊紅細胞受體（ER）。具體方法是將Percoll分離的位于第2、3梯度間的細胞洗滌后，調整細胞濃度為5×10⁶/ml，移入試管，加入2 ml FCS和2 ml 1×10⁸/mlSRBC，100 g 離心5 min，29度孵育1 h，輕輕重懸細胞，疊加于3 ml Ficoll上，400 ug 室溫下離心30 min，界面不形成花環的細胞即為LGL，純度可大于90%。

在用PBMC作為效應細胞進行NK活性測定時，如想除去PBMC懸液中混雜的紅細胞，可用蒸餾水低滲的方法除去紅細胞，而不用NH4Cl方法，因為后者可降低NK功能。

在小鼠NK實驗中必須注意小鼠的品系和周齡，三周內或3月齡以上小鼠的NK水平一般很低。