免疫共沉淀（Co-Immunoprecipitation，CoIP）是以抗體和抗原之間的專一性作用為基礎的用于研究蛋白質相互作用的經典方法，用于確定兩種蛋白質在完整細胞內生理性相互作用。

其原理是：當細胞在非變性條件下被裂解時，完整細胞內存在的許多蛋白質－蛋白質間的相互作用被保留了下來。如果用蛋白質x的抗體免疫沉淀x，那么與x在體內結合的蛋白質y也能沉淀下來。目前多用精制的prorein A預先結合固化在argarose的beads上，使之與含有抗原的溶液及抗體反應后，beads上的prorein A就能吸附抗原達到精制的目的。這種方法常用于測定兩種目標蛋白質是否在體內結合；也可用于確定一種特定蛋白質的新的作用搭檔。

一、免疫共沉淀的優點
 
1.  相互作用的蛋白質都是經翻譯后修飾的，處于天然狀態。
2.  蛋白的相互作用是在自然狀態下進行的，可以避免人為的影響。
3.  可以分離得到天然狀態的相互作用蛋白復合物。
二、免疫共沉淀的缺點
 
1.  可能檢測不到低親和力和瞬間的蛋白質－蛋白質相互作用；
2.  兩種蛋白質的結合可能不是直接結合，而可能有第三者在中間起橋梁作用；
3.  必須在實驗前預測目的蛋白是什么，以選擇后檢測的抗體，所以，若預測不正確，實驗就得不到結果，方法本身具有冒險性。
一、試劑準備
 1.  預冷PBS，RIPA Buffer，細胞刮子（用保鮮膜包好后，埋冰下），離心機。
 2.  用預冷的PBS洗滌細胞兩次，后一次吸干PBS。
3.  加入預冷的RIPA Buffer(1 ml/107個細胞、10 cm培養皿或150 cm2培養瓶，0.5 ml/5x106個細胞、6 cm培養皿、75 cm2培養瓶）。
 4.  用預冷的細胞刮子將細胞從培養皿或培養瓶上刮下，把懸液轉到1.5EP管中，4℃，緩慢晃動15 min（EP管插冰上，置水平搖床上）。
 5.  4℃，14000 g離心15 min，立即將上清轉移到一個新的離心管中。
 6.  準備Protein A agarose，用PBS 洗兩遍珠子，然后用PBS配制成50%濃度，建議減掉槍尖部分，避免在涉及瓊脂糖珠的操作中破壞瓊脂糖珠。
 7.   每1 ml總蛋白中加入100 ul Protein A瓊脂糖珠（50%），4℃搖晃10 min（EP管插冰上，置水平搖床上），以去除非特異性雜蛋白，降低背景。
 8.   4℃，14000 g離心1 5min，將上清轉移到一個新的離心管中，去除Protein A珠子。
 9． （Bradford 法）做蛋白標準曲線，測定蛋白濃度，測前將總蛋白至少稀釋1：10倍以上，以減少細胞裂解液中去垢劑的影響（定量，分裝后，可以在-20℃保存一個月）。
 10.  用PBS將總蛋白稀釋到約1 ug/ul，以降低裂解液中去垢劑的濃度，如果興趣蛋白在細胞中含量較低，則總蛋白濃度應該稍高（如10 ug/ul）。
 11.  加入一定體積的兔抗到500 ul總蛋白中，抗體的稀釋比例因興趣蛋白在不同細胞系中的多少而異。
 12.  4℃緩慢搖動抗原抗體混合物過夜或室溫2h，激酶或磷酸酯酶活性分析建議用2 h室溫孵育。
 13.  加入100 ul Protein A瓊脂糖珠來捕捉抗原抗體復合物，4℃緩慢搖動抗原抗體混合物過夜或室溫1 h，如果所用抗體為鼠抗或雞抗，建議加2 ul "過渡抗體"（兔抗鼠IgG，兔抗雞IgG）。
 14.  14000 rpm瞬時離心5 s，收集瓊脂糖珠-抗原抗體復合物，去上清，用預冷的RIPA buffer洗3遍，800 ul/遍，RIPA buffer有時候會破壞瓊脂糖珠-抗原抗體復合物內部的結合，可以使用PBS。
 15.  用60 ul 2x上樣緩沖液將瓊脂糖珠-抗原抗體復合物懸起，輕輕混勻，緩沖液的量依據上樣多少的需要而定（60 ul足夠上三道）。
16.  將上樣樣品煮5 min，以游離抗原，抗體，珠子，離心，將上清電泳，收集剩余瓊脂糖珠，上清也可以暫時凍-20℃，留待以后電泳，電泳前應再次煮5 min變性。

客戶提供：

1、組織、細胞、蛋白質溶液等樣品、用于免疫共沉淀的一抗及目的蛋白的相關信息；
2、如需構建基因的過表達載體，則還需提供過表達載體及其相關信息；
3、其他與免疫共沉淀相關信息。

實驗結果：

1、免疫共沉淀電子圖片及分析結果
2、相互作用蛋白鑒定結果，質譜鑒定結果和（或）western blot鑒定結果；
 3、完整的實驗步驟、使用儀器、軟件檢索參數等。