MTT主要有兩個用途：

1. 藥物（也包括其他處理方式如放射線照射）對體外培養的細胞毒性的測定；

2. 細胞增殖及細胞活性測定。

檢測原理為活細胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶能使外源性MTT還原為水不溶性的藍紫色結晶甲臜（Formazan）并沉積在細胞中，而死細胞無此功能。二甲基亞砜（DMSO）能溶解細胞中的甲臜，用酶標儀在490nm波長處測定其光吸收值，在一定細胞數范圍內，MTT結晶形成的量與細胞數成正比。

根據測得的吸光度值（OD值），來判斷活細胞數量，OD 值越大，細胞活性越強（如果是測藥物毒性，則表示藥物毒性越小）。

貼壁細胞：

1、收集對數期細胞，調整細胞懸液濃度，每孔加入100ul,鋪板使待測細胞調密度至1000-10000孔，（邊緣孔用無菌PBS填充）。

2.、5%CO2，37℃孵育，至細胞單層鋪滿孔底（96孔平底板）,加入濃度梯度的藥物,原則上，細胞貼壁后即可加藥，或兩小時，或半天時間，但我們常在前一天下午鋪板，次日上午加藥.一般5-7個梯度,每孔100ul,設3-5個復孔.建議設5個，否則難以反應真實情況

3、5%CO2，37℃孵育16-48小時，倒置顯微鏡下觀察。

4、每孔加入20ulMTT溶液（5mg/ml，即0.5%MTT），繼續培養4h。若藥物與MTT能夠反應，可先離心后棄去培養液，小心用PBS沖2-3遍后，再加入含MTT的培養液。

5、終止培養，小心吸去孔內培養液。

6、每孔加入150ul二甲基亞砜，置搖床上低速振蕩10min，使結晶物充分溶解。在酶聯免疫檢測儀OD490nm處測量各孔的吸光值。

7、同時設置調零孔（培養基、MTT、二甲基亞砜），對照孔（細胞、相同濃度的藥物溶解介質、培養液、MTT、二甲基亞砜）。

懸浮細胞：

1、收集對數期細胞，調節細胞懸液濃度1×106/ml，按次序將：

① 補足的1640（無血清）培養基40ul；

② 加Actinomycin D（有毒性）10ul用培養液稀釋 （儲存液100mg/ml，需預試尋找*稀釋度，1:10-1:20）；

③ 需檢測物10ul；

④ 細胞懸液50ul（即5×104cell/孔），共 100ul加入到96孔板（邊緣孔用無菌水填充）。每板設對照（加100ml 1640）。

2、置37℃，5%CO2孵育16-48小時，倒置顯微鏡下觀察。

3、每孔加入10 ul MTT溶液（5 mg/ml，即0.5%MTT），繼續培養4 h。（懸浮細胞推薦使用WST-1，培養4 h后可跳過步驟4），直接酶聯免疫檢測儀OD570nm（630nm校準）測量各孔的吸光值）

4、離心（1000轉x10min），小心吸掉上清，每孔加入100 ul二甲基亞砜，置搖床上低速振蕩10 min，使結晶物充分溶解。在酶聯免疫檢測儀OD570nm（630nm校準）測量各孔的吸光值。

5、同時設置調零孔（培養基、MTT、二甲基亞砜），對照孔，每組設定3復孔。