產(chǎn)品簡介：

Giemsa Stain以進口的姬姆薩色素、甲醇為主要原料，含*襯染劑，經(jīng)研磨配制而成，能呈現(xiàn)出清晰的細胞染色效果，經(jīng)常用于組織切片、血液和細胞涂片、細菌、染色體顯帶、原生動物寄生蟲等染色。吉姆薩色素(又稱姬姆薩色素)是由天青Ⅱ與伊紅混合而成，Giemsa染色原理和結果與瑞氏染色基本相同，姬姆薩染色液對胞漿著色力較強，能較好的顯示胞漿的嗜堿性程度，特別是對血液和骨髓細胞中的嗜天青、嗜酸性、嗜堿性顆粒，著色清晰，但是對胞核著色偏深,核結構顯色不佳，故姬姆薩染液常與瑞氏染 液聯(lián)合使用。

許多染料對DNA都有不同程度的親和性，故都可用作染色體的染色。在染色體的常規(guī)染色中，一般用吉姆薩、地衣紅、福爾根、石碳酸復紅等都可獲得良好的染色效果。G顯帶技術是指將染色體玻片標本經(jīng)過胰蛋白酶處理后，再用吉姆薩進行染色，使每條染色體沿其長軸顯示出一定數(shù)量的、寬窄和深淺不同的橫紋，即帶型。由于人類22 種常染色體和X、Y 染色體的帶型各具特征，根據(jù)帶型可清楚地分辨出每條染色液。GiemsaStain(1:9，染色體專用)由10×儲存液和磷酸鹽緩沖液組成，1:9 混合后使用，主要用于染色體G帶染色。 

自備材料：

1.PHA、秋水仙素

2.0.075M 溶液

3.恒溫培養(yǎng)箱

4.甲醇乙酸固定液(甲醇：冰乙酸=3：1)

5.載玻片、顯微鏡

操作步驟(僅供參考)：

1、配制 Giemsa Stain 工作液：按試劑(A):試劑(B)=1:9 混合，即取1份 Giemsa Stain 儲存液(10×)加入到9份的磷酸鹽緩沖液中充分混勻，即為GiemsaStain工作液，該工作液為即用型試劑，不易保存，即用即配。如效果不佳，可改變配制比例。

2、培養(yǎng)：取人類外周血3~5ml在PHA(一般工作濃度約60ug/ml)、血清等條件下體外培養(yǎng)3天，加入BrdU和(或)秋水仙素(一般工作濃度約0.5ug/ml)，培養(yǎng)30~60min并收集細胞即2000g離心5min，留取沉淀。

3、低滲：加入5~8ml提前37℃預熱的0.075M溶液37℃低滲處理20~30min。

4、固定：加入1ml新配制的甲醇乙酸固定液，輕輕混勻，2000g離心5min，留取沉淀；再次加入2~3ml甲醇乙酸固定液，輕輕混勻，室溫固定15~20min，2000g離心5min，留取沉淀；再次加入2~3ml 甲醇乙酸固定液，重復該步驟，留取沉淀。

5、滴片：加入少許甲醇乙酸固定液至沉淀中，輕輕混勻制成細胞懸液。滴加2~3滴細胞懸液于提前遇冷的載玻片上，吹散水蒸氣熏蒸促使細胞破裂(亦可高空垂直滴下細胞懸液促使細胞破裂)，70℃烤片2h。

6、消化：用0.025~0.05%的胰蛋白酶溶液處理載玻片30~90min，依據(jù)胰蛋白酶的濃度、批次等摸索處理時間。

7、染色：滴加Giemsa Stain工作液覆蓋玻片，室溫染色15～30min。

8、用自來水或蒸餾水緩慢從載玻片一端沖洗，將多余染色液沖掉?？諝飧稍?。

9、先用低倍鏡瀏覽整張玻片標本，找到分散良好且染色體長短適中的分裂相，再用油鏡觀察并識別染色體G顯帶核型。

注意事項：

1、涂片染色中Giemsa染色后，請勿先去除染液或直接對涂片用力沖洗。

2、如果染色過深或過淺，應調(diào)整染色時間或工作液濃度。

3、pH 值對染色有一定影響，載玻片應清潔、無酸堿污染，以免影響染色效果。

4、染色液經(jīng)稀釋后液面有金屬光澤則表示染液有染色作用，否則染色液可能失效。

5、染色液可重復使用，但不能多次重復，若有沉淀物應過濾后使用。 

有效期：24個月有效。