實驗病理學主要是以實驗動物模型及體外培養(yǎng)的細胞、組織、器官為研究對象，用組織病理學方法，研究人類疾病的發(fā)生發(fā)展規(guī)律，從而闡明疾病本質的基礎學科。實驗病理學內(nèi)容主要包括建立實驗動物模型、建立細胞模型、制片技術和染色技術。今天小編來和大家聊聊銜接實驗動物模型和制片技術的關鍵一步——取材。

實驗前準備

取材用具：

動物固定板、手術刀、鑷子、解剖剪刀、濾紙紗布、固定容器、固定液、實驗記錄本等等，如果需要對臟器進行稱量或拍照記錄，還需準備好天平、尺子、標簽等。

試劑：

麻醉劑、固定液、生理鹽水等。

廢物存放：

有明顯標志的黃色垃圾袋存放動物尸體和廢棄臟器。銳器盒存放廢棄針頭、刀片、注射器等。

解剖取材方法、要求及注意事項

解剖取材方法：

動物麻醉及處死過程要迅速，這是動物倫理的要求，也可避免動物機體內(nèi)因長期處于應激狀態(tài)而發(fā)生改變造成病理假象，對后續(xù)實驗結果分析造成影響。

基本要求：

①取材時，對動物模型的外表及臟器進行肉眼觀察并做實驗記錄；②對取材樣本要熟悉，盡可能快地完成整個過程，所有組織取材均要迅速，對于易自溶組織，如腸道、腺體等要優(yōu)先處理；③取材用的剪刀、刀片要鋒利，鑷子盡量不要使用齒鑷，鑷子不能直接夾住臟器組織，盡量用無齒鑷夾住臟器周圍結締組織取材；④如無特殊要求，相同器官取材時，選材部位應盡量保持一致；⑤如無特殊要求，所選組織應盡量包括臟器全部層次結構或者重要結構。

注意事項：

①臟器上附有血液、黏液等污物時，用生理鹽水沖洗后再固定，如果血液過多導致固定液變色時，應更換固定液；②如無特殊要求，胃腸標本應將內(nèi)容物沖洗干凈，以免內(nèi)容物影響組織固定，產(chǎn)生自溶；③肝腎等較大臟器可先將其切成較薄的塊狀組織，固定或者稍固定后再切成片狀繼續(xù)固定；④垂體、腎上腺、甲狀腺等小組織，應平鋪于濾紙上再固定，對于平鋪有很高要求的組織，例如皮膚，也可選取此種方式。

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