免疫熒光方法是最早建立的免疫組織化學技術。它利用抗原抗體特異性結合的原理先將已知抗體標上英光素以此作為探針檢查細胞或組織內的相應抗原在熒光顯微鏡下觀察。當抗原抗體復合物中的熒光素受激發光的照射后即會發出一定波長的熒光從而可確定組織中某種抗原的定位進而還可進行定量分析。由于免疫熒光技術特異性強、靈敏度高、快速簡便所以在臨床病理診斷、檢驗中應用較廣。那實驗背景染色較深的原因有哪些?

1、抗體濃度過高一抗濃度過高是常見的原因之一。解決辦法是每次使用新抗體前應當對其工作濃度進行測試，使每一抗體個體化找到適合自己實驗室的理想工作濃度既使是即用型的抗體也應如此，不能只簡單的按說明書進行染色。

2、抗體孵音時間過長或溫度較高解決辦法是嚴格執行操作規程更好隨身佩帶報時表或報時鐘及時提醒避免因遺忘而造成時間延長。現在流行的二步法(Polymer)敏感性很高要求一抗孵育的時間不是傳統的1小時而是30分鐘因此要根據染色結果進行調整。

3、DAB變質和顯色時間太長DAB更好現用現配如有沉渣應進行過濾后再用。配制好的DAB不應存放時間太長因為在沒有酶的情況下過氧化氫也會游離出氧原子與DAB產生反應而降低DAB的效力，未用完的DAB存放在冰箱里幾天后再用這種似乎節約的辦法是不可取的。DAB的顯色更好在顯微鏡下監控達到理想的染色程度時立即終止反應。不過當染色片太多時或用染色機時這樣做似乎不現實但至少應對一些新的或少用的抗體顯色時進行監控避免顯色時間過長。

4、組織變干修復液溢出后未及時補充液體、染色切片太多、動作太慢、忘記滴液、滴液流失等都是造成組織變干的原因。解決的辦法是操作要認真仔細采用DAKO筆或PAPPen在組織周圍畫圈可以有效的避免液體流失也能提高操作速度。

5、切片在緩沖液或修復液中浸泡時間太長(大于24小時)原因上不清楚，但現象存在。有的實驗室喜歡前將切片脫蠟至修復第二天加抗體進行免疫組化染色如果將裝有切片和修復液的容器放在40C冰箱過夜對結果無明顯影響如果放在室溫特別是炎熱的夏天會出現背景著色因此，不可存放時間太長。

6、一抗變質、質量差的多克降抗體注意抗體的有效期過期的抗體要么不昂色要么背暑著色，用新買抗體時更好設立陽性對照和用使用過的抗體作比較。