體內細胞培養及操作步驟
1、瘤細胞懸液接種
(1)無菌選取生長良好(有光澤,淡紅色)瘤組織或對數生長期培養瘤細胞。
(2)在PBS中將瘤組織剪碎后用勻漿器研磨,經80~100目篩網過濾成細胞懸液。
(3)培養細胞應用PBS洗兩遍。
(4)計數并調整細胞濃度至107~108/ml。
(5)常規消毒后,于接種部位(通常為背部或腋窩腹股溝皮下)用醫用注射器皮下潛行一段后注入細胞懸液(0.1ml/部位,>106細胞)。初次接種成功率低,細胞數盡可能多一些。
(6)次日注意觀察動物一般情況。初次接種一般有一段較長的潛伏期,以后隨著傳代潛伏期逐漸縮短,最后固定為一個相對穩定的時間。

2、腹水瘤的建立與腹水瘤的接種 將實體瘤細胞直接種于小鼠腹腔、腹壁或其他部位,引起腹水,腹水中含有瘤細胞,將這種腹水反復傳代,即可成為腹水瘤。初次傳代時,腹水常呈血性(含大量紅細胞),反復傳代后腹水逐漸變成乳白色。腹水瘤的接種過程如下。
(1)將凍存或培養的腹水瘤細胞離心和洗滌,進行細胞計數。
(2)消毒動物,左下腹穿刺接種106腹水瘤細胞。
(3)接種腹水瘤細胞后約7~12d,待小鼠腹部明顯膨大。用碘酒棉球消毒小鼠腹部,用9號針頭抽取腹水,也可行腹部解剖后,用滴管吸取。每只小鼠可抽3~5ml。
(4)抽取的腹水經3000rpm離心15min,收集上清,分裝凍存備用。
四、培養細胞的凍存及復蘇

原代分離細胞培養是指從供體內取出組織后,經機械以及消化分離成單個細胞或單一型細胞群,使之在體外模擬人體生理環境,在無菌、適當溫度和一定的營養條件下,生存、生長和繁殖。原代培養細胞常有不同的細胞成分,生長緩慢,但是更能代表所來源的組織細胞類型和表達組織的特異性特征。利用原代細胞培養做各種實驗,如藥物測試、細胞分化及病毒學方面的試驗效果很好。其操作步驟如下。

1、凍存細胞:
(1)選對數增生期細胞(證明無支原體污染),在凍存前1d換液。
(2)按常規方法把培養細胞制備成懸液,計數,使細胞密度達5×107/ml左右密度,離心,去上清。
(3)加入配制好的凍存液(培養液6.8ml,小牛血清2ml,DMSO 1ml,5.6%NaHCO3 0.1ml),按與去上清相同的量一滴一滴加入離心管中,然后用吸管輕輕吹打令細胞重懸。凍存細胞時培養液中加入保護劑10%二甲基亞砜(DMSO) 或甘油,可使冰點降低,使細胞內水分在凍結前透出細胞外。
(4)分裝于無菌凍存管中,每管加1.5m懸液。
(5)旋好凍存管并仔細檢查,一定要蓋緊,做好標記。
(6)凍存:在特殊的儀器或簡易的液氮容器中,按-1℃/min的速度,在30~40min時間內,下降到液氮表面,再停30min后,直接投入液氮中。要適當掌握下降冷凍速度,過快能影響細胞內水分透出,太慢則促進冰晶形成。
操作時應戴防護眼鏡和手套,以免液氮凍傷。

2、復蘇細胞:
(1)從罐中取出凍存管。
(2)迅速放入36℃~37℃水浴,不時搖動,使其急速融化,30~60s內完成。
(3)凍存管用70%酒精擦拭消毒后,打開蓋子,用吸管將細胞懸液注入離心管中,再滴加10ml培養液。
(4)低速離心(500~1000r/min) 5min,去上清后再用培養液洗一次。
(5)用培養液適當稀釋后,裝入培養瓶37℃培養,次日更換一次培養液后,繼續培養。以后仍按常規進行培養。
凍存細胞數量要充分,密度應達到107/ml,在融后稀釋20倍時,仍能保持5×105/ml數量。
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