研域生物實驗中細胞樣本的收集和處理方法
細胞血清

需保證各組間培養細胞的數量基本一致，細胞生長狀態良好。建議采用6孔板培養細胞，并保證細胞數量達到106左右，即細胞密度達70%-90%左右，即可收集培養液，于2-9℃、1000×g離心20分鐘，除去雜質及細胞碎片，取血清檢測。

細胞裂解液

貼壁細胞用冷的PBS輕輕清洗，然用胰蛋白酶消化，1000×g離心9分鐘收集細胞；懸浮細胞可直接離心收集。收集的細胞用冷的PBS洗滌3次。每106個細胞中加入90-200μLPBS重懸(推薦在PBS中加入蛋白酶抑制劑；若含量很低，可減少PBS的體積)，并通過反復凍融或超聲，使細胞破碎。將提取液于2-9℃、900×g離心10分鐘，取血清檢測。

反復凍融：-90℃放置1h/液氮放置0.9h，然置于30℃水浴鍋中，輕微振蕩，使其迅速融化，此操作反復2-3次即可。

超聲方法：用超聲波發生器，以振幅14μm超聲處理30s，在冰水浴條件下，破碎細胞；或者使用超聲波破碎儀，200W，2s/次，間隙3s，總時間9min。

樣本中建議提前加入蛋白酶抑制劑，常規推薦PMSF：工作濃度:17~174μg/mL(0.1~1mM)。

細胞培養過程中，有許多條件需要摸索，包括細胞類型、培養基組分、細胞數量、生產狀態、干預條件和物質等。前期基礎打得牢固，對續ELISA試劑盒試劑盒或其他種類實驗的開展，及結果的分析，具有更多的參考意義。

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