大腸桿菌 XL1-Blue 菌株。

質粒 DNA。

電轉化儀及配套的電擊杯。

培養基等常規實驗試劑。

細胞培養：將大腸桿菌 XL1-Blue 菌株接種于適宜的培養基中，在特定條件下培養至不同的生長階段。

制備感受態細胞：收集處于特定生長階段的細胞，通過適當的處理方法制備感受態細胞。

電轉化操作：將不同量的質粒 DNA 與感受態細胞混合，放入電擊杯中。設置不同的電轉化參數，如電場強度、脈沖時間等，進行電轉化操作。

轉化后處理：將電擊后的細胞轉移至復蘇培養基中，在適宜條件下培養一段時間，使細胞恢復并表達外源基因。

轉化效率測定：通過平板計數法或其他合適的方法測定轉化后的細胞數量，計算轉化效率。

當電場強度較低時，細胞膜上形成的微孔較少且較小，外源 DNA 難以進入細胞，導致轉化效率較低。

隨著電場強度的增加，微孔數量和大小增加，轉化效率逐漸提高。但當電場強度過高時，會對細胞造成嚴重的損傷，導致細胞死亡，從而降低轉化效率。

較短的脈沖時間可能不足以使外源 DNA 充分進入細胞，而較長的脈沖時間則可能對細胞造成過度損傷。

存在一個適宜的脈沖時間范圍，在此范圍內轉化效率較高。

處于對數生長期的細胞通常具有較高的轉化效率，因為此時細胞代謝活躍，細胞膜的通透性較好。

而處于靜止期或老化期的細胞轉化效率較低。

質粒 DNA 的質量和濃度、電擊杯的清潔度等因素也可能對轉化效率產生影響。