百歐博偉生物：實驗室中微生物菌種的分離與純化是微生物學研究的基礎操作，目的是從混合樣品中獲得單一菌株的純培養。以下是具體步驟及關鍵注意事項：

一、準備工作

1、實驗材料：

樣品來源（土壤、水體、空氣、臨床樣本等）。

培養基（根據目標微生物選擇，如LB培養基用于細菌，PDA培養基用于真菌）。

滅菌工具：接種環、涂布棒、移液槍、培養皿、試管等。

無菌操作設備：超凈工作臺、酒精燈、滅菌鍋。

稀釋液：生理鹽水（0.85% NaCl）或磷酸鹽緩沖液（PBS）。

2、滅菌處理：

所有工具和培養基需高壓滅菌（121℃, 20分鐘）。

超凈工作臺提前開啟紫外滅菌30分鐘。

二、樣品處理

樣品預處理：

固體樣品（如土壤）：取1g樣品加入9mL無菌稀釋液，振蕩混勻后靜置，取上清液。

液體樣品（如污水）：直接梯度稀釋（10?1~10??）。

富集培養（可選）：若目標菌含量低，可行選擇性富集培養。

三、分離方法

1、稀釋涂布平板法

步驟：

梯度稀釋樣品至10??~10??（不同樣品稀釋度需預實驗確定）。

取0.1mL稀釋液加入固體培養基平板，用無菌涂布棒均勻涂布。

倒置培養（細菌37℃ 24-48h；真菌25-28℃ 3-7天）。

挑取單菌落（形態、顏色均一）至斜面培養基保存。

2、平板劃線分離法

步驟：

接種環灼燒冷卻后蘸取樣品，在平板上分區劃線（4-5區，后一區與前區重疊1-2次）。

通過逐區稀釋，最終獲得單菌落。

3、其他方法：

傾注平板法：適用于嚴格厭氧菌。

選擇培養基法：添加抗生素或特定碳源抑制雜菌。

四、純化與驗證

1、純化操作：

將單菌落重復劃線/涂布2-3次，確保無雜菌。

觀察菌落形態、邊緣、顏色、透明度等是否一致。

2、純度驗證：

顯微鏡觀察（革蘭染色、芽孢染色等）。

生理生化試驗（如氧化酶試驗、糖發酵試驗）。

分子鑒定（16S rRNA測序或ITS測序）。

五、菌種保存

1、短期保存：

斜面培養基4℃保存（細菌1-3個月，真菌3-6個月）。

2、長期保存：

甘油管冷凍（-80℃）：菌懸液與20%-40%甘油混合。

冷凍干燥法（保存期可達10年以上）。

六、注意事項

全程嚴格無菌操作，酒精燈火焰旁操作。

接種環需灼燒冷卻后再接觸菌體，避免燙死微生物。

高稀釋度與低稀釋度平板均需保留，防止目標菌過度稀釋。

真菌分離需添加氯霉素（抑制細菌），細菌分離可添加抑制真菌。

通過以上步驟，可獲得單一微生物的純培養，為后續研究（如代謝分析、基因編輯等）奠定基礎。若實驗中出現污染或無法分離目標菌，需檢查操作步驟或優化培養基成分。

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