實驗原理

血紅蛋白電泳（hemoglobin electrophoresis）目的是檢出和確認各種正常和異常的血紅蛋白。

根據不同的血紅蛋白帶有不同的電荷，等電點不同，在一定的pH緩沖液中，血紅蛋白的等電點小于緩沖液的pH時帶負電荷，電泳時在電場中向陽極泳動，反之，Hb帶正電荷向陰極泳動。在一定電壓下，經過一定時間的電泳，不同的血紅蛋白所帶電荷不同，分子量不同，其泳動方向和速度不同，可分離出各自的區帶，同時對電泳出的各區帶進行比色或電泳掃描，可進行各種血紅蛋白的定量分析。一般zui常用的是pH8.6醋酸纖維薄膜電泳。

胞漿內存在糖原或多糖類物質（如粘多糖、粘蛋白、糖蛋白、糖脂等）中的乙二醇基（CHOH-CHOH）經過碘酸（periodicacid）氧化，轉變為二醛基（CHO-CHO），與雪夫（Schiff ）試劑中的無色品紅結合，形成紫紅色染料而沉積于細胞內多糖所在處。該反應稱為過碘酸-雪夫（PAS）陽性反應，以前也稱為糖原染色。

實驗方法

材料：

1. 緩沖液

（1）pH8.6 TEB緩沖液：稱取Tris10.29 g，EDTA 0.6 g，硼酸3.2 g，加蒸餾水至1000 ml。

（2）硼酸鹽緩沖液：稱取硼砂6.87 g，硼酸5.56 g，加蒸餾水至1000 ml。

2. 醋酸纖維薄膜、電泳儀、加樣器、分光光度計、比色杯。

方法：

1. 血紅蛋白溶液的制備

取肝素或者枸櫞酸鈉抗凝血3 ml，2000 rpm離心10分鐘后棄去血漿；用生理鹽水洗滌紅細胞三次（750 rpm，離心5分鐘），再2200rpm，離心10分鐘，棄去上清液；加入等量的蒸餾水；再加入0.5倍體積四化碳，用力振搖5分鐘，2200 rpm，離心10分鐘后將上層Hb液吸出備用。

2. 浸膜

將醋酸纖維薄膜剪成3 cm×8 cm的紙條，浸入pH8.6 TEB緩沖液，浸透后取出，用濾紙吸干。

3. 點樣

用加樣器取血紅蛋白液10 μl，然后垂直點樣到醋酸纖維膜上（毛面），距邊緣1.5 cm處。

4. 電泳

將硼酸鹽緩沖液作為電泳緩沖液倒入電泳槽中，將點樣后的醋酸纖維膜放于電泳槽架上，點樣在陰，200 V，30分鐘。

5. 洗脫

分別剪下HbA、HbA2，放入試管內，分別加入蒸餾水15 ml和3 ml，輕輕振蕩，待血紅蛋白*洗脫后，混勻。

6. 比色

洗脫液用蒸餾水空白調零，415 nm測定吸光度。

7. 計算

HbA2（%）=HbA2管吸光度/（HbA管吸光度×5+ HbA2管吸光度）×100%

實驗結果計算

pH8.6 TEB緩沖液醋酸纖維電泳參考范圍：HbA>95%，HbA2 1%-3.1%

注意事項

1. 電泳時間不能太長,電泳時醋纖膜不能變干,故應觀察到HbA和HbA2清晰分開就停止電泳,電泳時間太長區帶反而擴散模糊；

2. 點樣量不能太多,如血紅蛋白液太多，色帶易脫落或染色不透，可出現HbA相對增高的假陽性結果；

3. 避免醋酸纖維膜被蛋白質污染；

4．電流不應過大，否則血紅蛋白分不開帶；

5．應同時做正常人和必要的已知異常血紅蛋白的標本對照。