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實驗方法
- 細胞培養技術
| 實驗方法原理 | 選用Wistar大鼠經消化酶灌注肝臟后,用分離液分離HSC，通過觀察其自發熒光及其顯著特征性結構的脂肪染色、細胞免疫化學染色等方法鑒定。 |
|---|---|
| 實驗材料 | 雄性 SD 大鼠 |
| 試劑、試劑盒 | 戊巴比妥鈉 小牛血清 DMEM 酶消化液I、Ⅱ Nycodenz D-Hanks’液 HBSS 臺盼蘭 |
| 儀器、耗材 | 手術器械 尼龍網 相差顯微鏡 熒光顯微鏡 |
| 實驗步驟 | 一、實驗步驟 1. 大鼠腹腔麻醉后在超凈臺上剖腹，進行門靜脈插管。
2. 以D-Hanks’液灌注，同時剪開下腔靜脈，沖掉血液后，改灌以100 ml 酶消化液I(0.05% IV 型膠原酶)。
3. 待肝臟變軟后，離體肝臟并剪碎，繼續以酶消化液II(含20U/ml DNase I 的0.05% IV 型膠原酶)消化15 min，尼龍網過濾后以450 g 離心5 min(4℃，下同)。
4. 以HBSS 重懸沉淀至10 ml，再混以20 ml Nycodenz 液，分置于離心管中，并分別覆以2-3 ml HBSS，1450 g 離心16 min 后取界面細胞。
5. 以HBSS重懸后再次離心收集細胞，以DMEM重懸后進行細胞計數，并判斷存活率和產量，zui后按照常規方法接種(105 細胞/cm2 )，次日換液，以后每2-3 天換液一次。
6. 傳代方法：棄去培液后以D-Hanks’液洗兩次，加0.125%胰酶(原代加0.05% EDTA)消化，鏡下觀察細胞突起回縮(2-5 min左右)，以*培液(DMEM+10% NBS)終止反應(若不用EDTA，可以不需離心)， 充分吹打后以 1:2-1:3 接種，然后繼續培養(5% CO2，37℃)。
接種次日，光鏡下可見細胞呈星芒狀，胞質內有脂滴，熒光鏡下328 nm 處見自發熒光。附照片(圖 1)。
圖 1. 原代培養第 2 天的大鼠肝星狀細胞 收起 |
| 其他 | 一、討論 進一步鑒別需要做免疫組化：Desmin 和α-SMA；后者在細胞激活后才表達。也采用過無須原位消化的方案，*可行，只不過消化時間更難控制！實驗采用原代培養的或傳代后9代內的細胞(5 代以內)。 二、文獻 1. 袁桃霞，張錦生，張月娥，等. 大鼠肝 Ito 細胞的體外培養及肝素對其抑制作用的觀察. 上海醫科大學 學報,1996,23(2):90-93.
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