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生物分子類實驗室常用實驗技術原理匯總-9

來源:廣州譽維生物科技儀器有限公司   2014年12月11日 10:17  

二十六、雙向凝膠電泳(2-DE)

 

雙向凝膠電泳的原理是*向基于蛋白質的等電點不同用等電聚焦分離,第二向則按分子量的不同用SDS-PAGE分離,把復雜蛋白混合物中的蛋白質在二維平面上分開。

二十七、mRNA的分離與純化(寡聚(dT)纖維素柱純化mRNA)

真核細胞的mRNA分子zui顯著的結構特征是具有5’端帽子結構(m7G)和3’端的Poly(A)尾巴。絕大多數哺乳類動物細胞mRNA的3’端存在20-30個腺苷酸組成的Poly(A)尾,通常用Poly(A+)表示。這種結構為真核mRNA的提取,提供了極為方便的選擇性標志,寡聚(dT)纖維素或寡聚(U)瓊脂糖親合層析分離純化mRNA的理論基礎就在于此。

mRNA的分離方法較多,其中以寡聚(dT)-纖維素柱層析法zui為有效,已成為常規方法。此法利用mRNA 3’末端含有Poly(A+)的特點,在RNA流經寡聚(dT)纖維素柱時,在高鹽緩沖液的作用下,mRNA被特異地結合在柱上,當逐漸降低鹽的濃度時或在低鹽溶液和蒸餾水的情況下,mRNA被洗脫,經過兩次寡聚(dT)纖維柱后,即可得到較高純度的mRNA。

二十八、His-tag純化蛋白

His•Tag序列(6、8或10個連續的組氨酸殘基)與固定在基于NTA(氮川三乙酸鎳) -和IDA- 的His•Bind樹脂上的二價陽離子Ni2+結合。洗去未結合蛋白后,用咪唑或稍低的pH洗脫并回收目標蛋白。該通用系統使得可在溫和、非變性條件,或存在6M胍或尿素條件下純化蛋白。

二十九、RNA酶保護試驗方法 (RNase Protection Assay,RPA)

RNA酶保護法是近十年發展起來的一種全新的mRNA定量分析方法。其基本原理是將標記的特異RNA探針(32P或生物素)與待測的RNA樣品液相雜交,標記的特異RNA探針按堿基互補的原則與目的基因特異性結合,形成雙鏈RNA;未結合的單鏈RNA經RNA酶A或RNA酶T1消化形成寡核糖核酸,而待測目的基因與特異RNA探針結合后形成雙鏈RNA,免受RNA酶的消化,故該方法命名為RNA酶保護實驗。與Northern blot和RT-PCR比較,RPA有以下幾個優點:1. 檢測靈敏度比Northern雜交高。由于Northern雜交步驟中轉膜和洗膜都將造成樣品和探針的損失,使靈敏度下降,而RPA將所有雜交體系進行電泳,故損失小,提高了靈敏度。2. 由于PCR擴增過程中效率不均一和反應“平臺”問題,基于PCR產物量進行分析所得數據的可靠性將下降,而RPA沒有擴增過程,因此,分析的數據真實性較高。3.由于與反義RNA探針雜交的樣品RNA僅為該RNA分子的部分片段,因此,部分降解的RNA樣品仍可進行分析。4.步驟較少,耗時短。與Northern雜交相比,省去了轉膜和洗膜的過程。5. RNA-RNA雜交體穩定性高,無探針自身復性問題,無須封閉。6. 一個雜交體系中可同時進行多個探針雜交,無競爭性問題。7. 檢測分子長度可以任意設置,靈活性大。RPA的缺點是需要同位素標記探針。

三十、免疫組化

三十一、各種分子標記技術的比較

限制性片段長度多態性(Restriction fragment length polymorphisms ,RFLP) 可以作為遺傳標記,開創了直接應用DNA 多態性的新階段,是zui早應用的分子標記技術 。RFLP 是檢測DNA 在限制性內切酶酶切后形成的特定片段DNA的大小,反映DNA 分子上不同酶切位點的分布情況,因此DNA序列上的微小變化,甚至1 個核苷酸的變化,也能引起限制性內切酶切點的丟失或產生, 導致酶切片段長度的變化。

隨機擴增多態DNA (Randomamplified polymorphic DNA ,RAPD) 技術,由于其*的檢測DNA多態性的方式使得RAPD 技術很快滲透于基因研究的各個領域。RAPD 是建立于PCR 基礎之上的分子標記技術,基本原理是利用一個隨機引物(8~10 個堿基) 通過PCR 反應非定點地擴增片段DNA,然后用凝膠電泳分離擴增片段來進行DNA多態性研究。對任一特定引物而言,它在基因組DNA序列上有其特定的結合位點,一旦基因組在這些區域發生片段DNA插入、缺失或堿基突變,就可能導致這些特定結合位點的分布發生變化,從而導致擴增產物的數量和大小發生改變,表現出多態性。

擴增片段長度多態技術(AFLP) ,又名限制片段選擇擴增技術(Selective restriction fragment amplifi2cation ,SRFA) ,于1993 年由荷蘭KEYGENE 公司的Zabean 和Vos 等發明。AFLP 是近年來迅速發展起來的一種分子標記技術,它將基因組DNA用成對的限制性內切酶雙酶切后產生的片段用接頭(與酶切位點互補) 連接起來,并通過5′端與接頭互補的半特異性引物擴增得到大量片段DNA,從而形成指紋圖譜的分子標記技術。AFLP 指紋呈孟德爾式共顯性和顯隱性遺傳。

SSR 也稱微衛星DNA ,是一類由幾個(多為2~6個) 堿基組成的基序串聯重復而成的DNA 序列,其中zui常見的是雙核苷酸重復,即(CA) n和(TG) n ,每個微衛星DNA 的核心序列結構相同,重復單位數目10~60 個,其高度多態性主要來源于串聯數目的不同。不同遺傳材料重復次數不同,導致了SSR 長度的高度變異性,這一變異性正是SSR 標記產生的基礎。

單核苷酸多態性(Single nucleotide polymorphism ,SNP) 被稱為第3 代DNA分子標記,是指同一位點的不同等位基因之間個別核苷酸的差異,這種差異包括單個堿基的缺失或插入 ,更常見的是單個核苷酸的替換,且常發生在嘌呤堿基(A 與G) 和嘧啶堿基(C 與T) 之間。SNP 標記可幫助區分兩個個體遺傳物質的差異,被認為是應用前景的遺傳標記。

 

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