脫氫抗壞血酸（dehydroascorbate，DHA）含量測定試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

脫氫抗壞血酸含量測定試劑盒

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

AsA 作為植物細胞一個重要生理指標，其 AsA 的含量、氧化還原狀態(tài)(AsA/DHA 比率)及其合成與代謝相關酶類活性的變化涉及植物對一系列環(huán)境脅迫的響應。DHA 是AsA 的可逆的氧化型，在生物體內(nèi)，與抗壞血酸共同組成氧化還原系統(tǒng)，具有電子受體的作用。

測定原理：

DTT 還原DHA 生成AsA，通過測定體系中AsA 的生成速率，即可計算出 DHA 含量。

組成：

試劑三：粉劑×1 瓶，4℃保存。臨用前加入 10ml 蒸餾水充分溶解。

標準品：粉劑×1 瓶， 4℃保存。臨用前加入 5.743 ml 蒸餾水充分溶解；吸取 0.1 ml 上述溶液，加入 0.9 ml蒸餾水，混勻，即為 100μmol/L DHA。

自備儀器和用品：

低溫離心機、紫外分光光度計、1ml 石英比色皿、可調(diào)式移液器、研缽、冰和蒸餾水。

樣品中 DHA 提取：

組織：按照組織質(zhì)量（g）：試劑一體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 試劑一）進行冰浴勻漿。12000g，4℃離心 20min，取上清置冰上待測。

細菌、真菌：按照細胞數(shù)量（104 個）：試劑一體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細胞加入 1ml 試劑一），冰浴超聲波破碎細胞（功率 300w，超聲 3 秒，間隔 7 秒，總時間 3min）；12000g， 4℃離心 10min，取上清液置于冰上待測。

血清等液體：直接測定。

DHA 測定操作：

分光光度計預熱 30 min，調(diào)節(jié)波長到 265 nm，蒸餾水調(diào)零。

試劑二在 25℃水浴鍋中預熱 30 min。

標準管：依次在 1ml 石英比色皿加入 100μl 標準液、800μl 預熱的試劑二和 100μl 試劑三，迅速混勻后于 265nm 比色，記錄 10s 和 130s 的吸光值A1 和A2，△A 空白管=A2-A1。

測定管：依次在 1ml 石英比色皿加入 100μl 上清液、800μl 預熱的試劑二和 100μl 試劑三，迅速混勻后于 265nm 比色，記錄 10s 和 130s 的吸光值A3 和A4，△A 測定管=A4-A3。

注意：標準管只需測定一次。

計算公式：

按蛋白濃度計算

DHA(nmol/mg prot) =[C 標準液×△A 測定管÷△A 標準管×V 標準]÷（Cpr×V 樣）

=100×△A 測定管÷△A 標準管÷Cpr

按樣本質(zhì)量計算

DHA(nmol/g 鮮重) =[C 標準液×△A 測定管÷△A 標準管×V 標準]÷(W×V 樣÷V 樣總)

=100×△A 測定管÷△A 標準管÷W

按細胞數(shù)量計算

DHA(nmol/104 cell) =[C 標準液×△A 測定管÷△A 標準管×V 標準]÷(W×V 樣÷V 樣總)

=100×△A 測定管÷△A 標準管÷細胞數(shù)量

（4）按液體體積計算

DHA(nmol/ml) =[C 標準液×△A 測定管÷△A 標準管×V 標準]÷V 樣

=100×△A 測定管÷△A 標準管

C 標準液：100μmol/L；V 標準：加入反應體系中標準液體積，0.1ml；V 樣總：上清液總體積，1.0 ml=0.001 L；V 樣：加入反應體系中上清液體積，0.1ml；W：樣品質(zhì)量，g。

注意事項：

臨用前配制的試劑未使用完的 4℃保存，3 天內(nèi)使用完。

最di檢出限為 10μmol/L。

脫氫抗壞血酸含量測定試劑盒